Разведение раков в бассейне: Страница не найдена — Бизнес портал

Разведение раков в домашних условиях

Разведение раков в домашних условиях давно перестало быть только хобби: сегодня это прибыльный бизнес, не требующий серьезных вложений и подходящий для реализации, как в больших, так и в скромных объемах. Это животное не нуждается в дорогостоящем корме и покупке множества аксессуаров для содержания.

Как содержать рака в домашних условиях?

Основной аспект, с которым придется определиться заранее – масштабы производства популярного деликатеса. Так как разводить раков в домашних условиях можно в искусственных и проточных водоемах, то все зависит сугубо от желания и финансовых возможностей:

1. Если семья планирует обеспечивать мясом исключительно собственные потребности, то хватит и нескольких аквариумов – их можно установить в подвале или подсобном помещении.
2. Для малого бизнеса разведение раков в домашних условиях можно осуществлять в бассейне, оборудованном на заднем дворе или пригородном участке.
3. Внушительную прибыль обеспечит искусственный водоем, а если их будет двое – то раков можно будет выращивать на продажу круглогодично.

Раки в домашних условиях в аквариумах

Запрещается даже пытаться разводить этих животных в одной емкости вместе с рыбами или кальмарами. Раки могут вести себя как каннибалы, уничтожая соседей по аквариуму. Главное правило – поддержание чистоты воды, потому что молодняк гибнет, как только она зеленеет и в ней появляются вредные микроорганизмы. В число основных рекомендаций, облегчающих разведение раков в домашних условиях для начинающих, также входят:

1. Минимальный размер подходящего аквариума – 250 л: в меньшем объеме смогут одновременно жить лишь 7-8 крупных особей.
2. На дно следует уложить крупный грунт и камушки, декоративные коряги и керамические трубки – ракам комфортнее жить, когда поблизости есть укрытия.
3. В холодное время года питомцам требуется обогреватель – особое предпочтение при выборе стоит отдавать фильтрам с встроенным терморегулятором или нагревательным донным коврикам.

Разведение раков в бассейне в домашних условиях

Емкость под разведение можно вырыть самостоятельно и вымостить ее дно крупным щебнем вперемешку с глиной. Выращивание раков в домашних условиях в бассейне имеет один существенный плюс – его можно укрыть в зимний период, что увеличить производительность минимум вдвое, поскольку раки тогда не будут впадать в спячку во время холодов. Животные постоянно едят и растут, что даст заметную прибавку в весе и размерах каждой особи. Одновременно с ними можно выращивать некоторые виды придонных моллюсков – перловицу или гребешок.

Рак – уход в домашних условиях

Для разведения рекомендуется дальневосточные и европейские виды животного, потому что они нетребовательны к условиям содержания и недорого стоят. Они делятся на озерных и речных раков, но вторых невозможно разводить в емкостях со стоячей водой – им подходят исключительно искусственные озера. В остальном уход состоит из соблюдения следующих правил:

1. Очищения водоема не только перед запуском, но и на продолжении всего цикла жизни моллюсков. Ключевое оборудование для разведения раков в домашних условиях – профессиональный очиститель, оснащенный системой спуска и подачи.
2. Соблюдение баланса кислорода.
3. Выбор качественного корма для раков.
4. Создание условий для размножения особям мужского и женского пола.

Чем кормить речного рака в домашних условиях?

Для питания молодняка используются те же продукты, что и для взрослых. Можно самостоятельно составить им рацион, узнав, что едят раки в домашних условиях, или покупать готовые корма. В состав здорового питания, в котором нуждаются эти животные, обязательно должны входить жиры, овощи с высоким уровнем клетчатки, протеин и минеральные добавки с кальцием. Суточная норма пищи на одного рака должна составлять 4-5% от его веса. В нее могут входить:

• тертая морковь;
• улитки;
• мертвая рыба;
• дождевые черви;
• запаренные зерновые культуры;
• вареный картофель.

Размножение раков в домашних условиях

Чтобы разведение было прибыльным, важно учитывать реальный приплод, который могут дать моллюски. Среднестатистическая самка производит до 200 рачков в год, но остаются живыми и вырастают до нужных размеров только 20%. Существенно повысить этот показатель можно, соблюдая норму корма – тогда старшие сородичи не будут поедать молодняк. Есть и другие правила, способствующие размножению при разведении раков в домашних условиях:

1. Спаривание у взрослых особей происходит ранней осенью. Численность важно стараться регулировать таким образом, чтобы на взрослого самца приходилось две самки – больше оплодотворить он не сможет. Специалисты, имеющие большой опыт в том, как правильно разводить раков в в домашних условиях, уверяют, что если самец увидит третью самку, то съест ее.
2. После спаривания всех самок помещают в отдельные резервуары: к концу весны икра переместится под хвост и ее можно будет увидеть невооруженным глазом.
3. После того, как раки вылупятся, самку убирают – это даст приплоду возможность вырасти.

 

Разведение раков бизнес на домашней ферме: видео

Ферма по разведению раков в домашних условиях: видео с фермы. Сколько можно заработать на выращивании раков?

Бизнес на раках весьма прибыльное занятие если подойти к нему с умом. Раки довольно востребованный деликатес, их покупают всегда и везде несмотря на довольно высокую цену.

В чём же причина такого спроса?

Раков практически не выращивают на продажу, ну раковые фермы конечно есть, но их очень мало. Более 90% раков которые попадают в продажу вылавливаются в природных водоёмах, но численность ракообразных стремительно падает, а спрос только увеличивается поэтому имеет смысл заняться выращиванием раков на продажу в искусственных условиях.

Разводить раков можно как в открытых водоёмах, так и в бассейнах с системой фильтрации воды как выращивают осетровых рыб.

Особенности разведения раков в домашних условиях

Но не всё так просто как кажется на первый взгляд, у ракообразных есть свои особенности, которые нужно учитывать перед тем как заниматься их содержанием и разведением.

Для раков свойственен каннибализм, то есть им не составит особого труда съесть своего соплеменника в период, когда он начнёт линять и скинет свой панцирь. Но это случается, когда им нечего есть, если в водоёме не будет недостатка корма, то каннибализма практически не будет.

Также раки могут жить только в чистой воде, в водоёмах где идёт сброс промышленных или бытовых отходов раки быстро погибают. То есть для разведения раков вам понадобится водоём с чистой водой или бассейны с системой фильтрации воды.

Раки довольно медленно растут. В природных условиях при понижении температуры воды раки практически перестают питаться и расти, поэтому товарный вес они набирают только на 3 год жизни. Но если раков содержать в крытых бассейнах с системой подогрева воды, то расти они будут быстрее, в тёплом бассейне с температурой воды от + 20 до +30 градусов, речной рак вырастает уже за год (вес 50 — 60 грамм).

Как вариант можно разводить австралийских красноклешневых раков, они растут очень быстро, за полгода набирают вес около 60 грамм, обычный речной рак в природном водоёме за этот период набирает вес только 20 грамм. Но австралийский рак теплолюбив, при понижении температуры воды ниже +15 градусов сразу погибает.

Содержать раков можно и в бассейнах, на видео автор показывает свою раковую мини ферму.

Итак, вы решили заняться раковым бизнесом, у вас уже есть пруд, но нужны сами раки, если есть возможность приобрести молодняк на раковой ферме, это будет лучшим вариантом, но найти такую ферму крайне проблематично. Остаётся ещё один вариант, отловить на ближайшей речке или озере самок с икрой, делать это лучше в период с начала марта, когда у самок есть икра.

Ловля проводится самодельными раколовками, но должен вас предупредить что ловля раков в большинстве водоёмов запрещена, также раков можно приобрести у рыбаков.

В природных водоёмах нашей страны обычно водятся широкопалый и узкопалый раки, это наиболее распространённые и адаптированные виды.

При заселении раков в пруд нужно выровнять температуру воды в емкости с раками, она должна быть такой, как и в пруду для заселения.

Чем кормить раков?

Сами по себе раки всеядные, они поедают растительность в пруду и пищу животного происхождения. Достаточно чтобы в пруду была своя растительность, если её нет, то её можно набрать в ближайшей речке.

Раков периодически нужно подкармливать рыбным комбикормом, мясными отходами, рыбой, раки охотно поедают земляных червей.

Не нужно давать много корма, от переизбытка органики вода начинает цвести и портиться.

В природных условиях период спаривания у раков проходит в период с октября по ноябрь, самцы становятся половозрелыми на 3 год жизни, самки на 4-й год.

Самка откладывает икру себе под брюшко где она прикрепляется к брюшным ножкам самки плеоподам, таким образом икринки постоянно омываются свежей водой и насыщаются кислородом. Одна самка за раз может отложить несколько сотен икринок.

Через 2 месяца (период май — июль) из икринок вылупляются личинки. В этот период для нормального роста и развития личинок, вода в пруду должна быть с температурой не менее 20 °С.

На фото месячный молодняк готовый для пересадки в выгульный пруд.

В установке УЗВ при постоянной температуре воды в +25 градусов раки за год набирают товарный вес 50 грамм.

Разведение раков как бизнес выгодно или нет?

Конечно это выгодное занятие, стоимость раков зависит от их размера, чем больше размер, тем выше цена.

Примерная стоимость раков за 1 кг:

• Весом по 50 грамм – 10$ за 1 кг.
• Весом по 70 грамм – 15$ за 1 кг.
• Весом более 100 грамм – 20$ за 1 кг.

Разведение раков становится важным направлением латвийской аквакультуры | Бесплатные

 

 

Результаты последних исследований запасов пресноводных раков в Латвии (в рамках совместного норвежско-латышского проекта «Сохранение популяции раков в Латвии и их устойчивое использование») показали, что природные ресурсы Латвии очень богаты раками. Некоторое время назад в стране была воссоздана заново отрасль по разведению ценных видов раков. Данные исследований были включены в работу научных и общественных организаций.

По данным контрольных выловов и анкетирования, стало очевидно, что с 1951 года раки присутствовали в 500 озерах, в 460 из которых площадь поверхности была равна или превысила 10 га. С 1992 по 2005 гг. раки были обнаружены еще в 33 озерах, в которых раньше их никогда не было. Исследования внутренних вод показали, что не только реки и озера пригодны для обитания раков, но также карьеры для добычи глины и гравия. Развитие фермерства раков в гравийных карьерах могут стать хорошим способом разведения раков.

Чтобы сохранить природные ресурсы Латвии, необходимо грамотно ими управлять, чтобы увеличивать устойчивые популяции. Это предполагает принятие таких мер по более активной организации рекреационного и коммерческого промысла раков. Нужно поддерживать и развивать устойчивые природные популяции раков. Несбалансированное развитие популяции раков, недостаток натурального корма, а также внешние природные факторы сдерживают естественный рост популяции раков. Слабые особи и популяции предрасположены к заболеваниям, в результате, все труднее становится сохранить популяцию.

Виды

В настоящее время на территории Латвии распространены:

широколапый рак (Astacus astacus) — вид, обитающий в местных реках, озерах и ручьях на всей территории Латвии;

узкопалый рак (Astacus leptodacilus) — вид рака, который обитает в некоторых озерах;

Американский сигнальный рак (Pacifastacus leniusculus) — вид, впервые ввезенный в Латвию в 1971 году и вновь интродуцированный в одно из озер в районе Лимбази;

Американский полосатый рак (Orconectes limosus) — вид, обитает в бассейне реки Лиелупе, был ввезен из Литвы много лет назад.

Узкопалые, сигнальные и полосатые раки считаются привнесенными на территорию Латвию. Этот вид раков отличается агрессивностью, скоростью воспроизводства и сопротивляемостью природным изменениям, что поставило под угрозу ареал местного широколапого рака, вытесняя его из естественной среды обитания.

Аквакультура

С 1950-х гг. раков выращивали в прудах на нескольких рыбных фермах. В 1960-х гг. в Латвии началось разведение широлапого рака с целью восстановить популяцию раков, получить мальков, развести их в инкубаторе и выпустить в дикую природу.

В 1970-х гг. изучение популяций раков стало более системным, с целью предотвратить заболевание раков чумой. В результате научных исследований был выведено первое поколение раков с высокой сопротивляемостью болезни. Кроме этого, в результате исследований были разработаны способы разведения личинок и мальков в условиях натуральной инкубации, технологии корма и зарыбления, методы внедрения раков в условия дикой природы.

К сожалению, в связи с установлением независимости Латвии эти исследования позже были прекращены. В августе 1998 года общественная организация Kurzeme Regional Development Centre выступила с инициативой создания Латвийской Ассоциации фермеров по разведению рыбы и раков (Latvian Crayfish and Fish Farmers Association), членами которой к 2001 году стали уже 125 компаний и частных предпринимателей. Ассоциация тесно сотрудничает с Министерством сельского хозяйства, Национальным управлением по рыболовству и др.

При поддержке Латвийской Ассоциации фермеров по разведению рыбы и раков были, в частности, созданы 3 региональных центра по выращиванию раков: SIA «Astacus» (в центральной части Латвии), SIA «Vezi» (на западе Латвии), SIA «Vlakon» (на востоке Латвии). Более 30 сельскохозяйственных компаний практикуют выращивание раков, культивируя тем самым земли с низкой интенсивностью, что помогает повысить доход и улучшить социально-экономическую ситуацию в регионе. Ассоциация фермеров ведет работу в двух направлениях: фермы по разведению раков полного цикла, разведение раков совместно с разведением пресноводной рыбы.

Развитие

Создание центра по разведению раков привело к осознанию необходимости развития инфраструктуры для совершенствования индустрии в целом. В настоящее время уже были достигнуты некоторые положительные результаты. В частности, разработаны новые методы разведения, зарыбления, инкубации, кормления раков. Был существенно расширен ареал их обитания, а также запасы раков в водоемах Латвии. Кроме этого, были созданы фермы по разведению раков на основе домашних хозяйств, органические фермы по разведению раков. Была улучшена система управления природными ресурсами в районах и областях Латвии.

Однако самое главное на пути устойчивого разведения раков — это качественное образование. С этой целью созданы специальные образовательные программы для специалистов и заинтересованных лиц при поддержке Латвийского консультационного центра по сельскому хозяйству. Кроме этого, участвуя в латвийско-норвежском проекте можно получить научную степень.

Разведение раков как идея бизнеса

Раки, всеми любимы, вкусны и питательны, всё же не являются продуктом первой необходимости. Поэтому идея разведения раков, для последующей реализации, должна быть основана на знании рынка сбыта.

Обычный человек не ест раков каждый день. Они украшают стол в торжественные моменты жизни, они востребованы на отдыхе, их покупают просто, чтобы устроить в доме праздник. За раками чаще идут на базар. Там есть выбор по качеству и цене, можно поторговаться.

Содержание статьи

1. Технология разведения раков
   1. Виды раков
   2. Где закупать раков для разведения?
   3. Организация природного водоёма
   4. Организация круглогодичного закрытого водоёма
   5. Содержание водоёмов
2. Рентабельность бизнеса
   1. Расходы
   2. Прибыль

Раки есть в супермаркете и рыбном магазине. Здесь товар дороже, зато уровень санитарии повыше.
Рестораны, кафе, бары, сауны и бани заинтересованы в свежих раках. Они берут их небольшими партиями или заказывают по просьбе клиентов. Связь с такими организациями надёжный источник сбыта.

Лучшее направление сбыта — сдача готовой продукции оптовому покупателю. Цена может быть занижена, но никаких проблем с транспортировкой и санитарными документами.

Если вы знаете куда будете сбывать продукцию, смело приступайте к реализации бизнес-проекта.

Технология разведения раков

Виды раков

• Широкопалые европейские. Мясистая порода с большими клешнями и брюшком, не очень плодовиты, 50 икринок за один раз.
• Длиннопалые европейские. Преимущество в плодовитости, около 300 икринок, быстрорастущие.
• Австралийский рак. Самый востребованный вид, очень мясистый. Требует хороших условий, температурного режима, по 20 литров воды на одну особь. Хорошо себя чувствует в бассейнах.
• Кубинский голубой рак. Достигает взрослых размеров за полгода. Неприхотлив в еде, любит жёсткую воду до 25 градусов. Лучше размножается в песчаных водоёмах.
• Мраморный рак. Любит хорошие условия, температуру воды до 28 градусов. Способ размножения — однополый. Самец, он же самка вынашивает до 100 икринок. Крупная порода.

Где закупать раков для разведения?

 

Приобретать следует оплодотворённых самок. Покупают их поштучно и на вес. Закупку делают на раковых фермах и в промысловых компаниях. У опытных фермеров можно заказать сформированное маточное стадо. Останется только без потерь его транспортировать. В зависимости от породы, одна самка стоит до 80 $. Обычная же, не породистая самка обойдётся 3-5 $. Для того чтобы вырастить одну тонну раков необходимо закупить 500-600 самок, на вес, это около 100 кг.

Можно отловить самок в природном водоёме. Потребуются усилия, зато бесплатно.

Организация природного водоёма

Главное для раков — дно покрытое камнями, щебнем, глиняными насыпями. Им необходимо множество нор, коряг и укрытий.

Глубина водоёма до 2 метров, площадь не менее 30 м.кв. Это должен быть котлован с разными уровнями дна. Таких водоёмом нужно, как минимум, три. Необходимо предусмотреть водосток и возможность добавления воды.

В открытых водоёмах сложно добиться постоянной температуры воды. Важно утеплять их зимой, чтобы они не промерзали. Раки разводятся и растут в них медленно, потому что впадают в длительную спячку.

Организация круглогодичного закрытого водоёма

Самый перспективный вариант, направленный на достижение скорой прибыли — укрытые бассейны. В них благоприятные условия можно создавать постоянно. Раки при комфортной температуре не впадают в спячку. Они питаются и растут весь год.

Первый год работы пойдёт для возврата вложенных денег, зато следующий порадует прибылью.

Содержание водоёмов

Чистота воды очень важный показатель для роста раков. Её необходимо сливать и добавлять на треть каждые две недели. Это не нарушит микроклимат и добавит кислорода.

Маленьких рачков содержат в отдельном бассейне. Это повышает их выживаемость, так как взрослые раки — каннибалы, поедают молодняк. Из 200 вылупившихся рачков, зрелости достигают не более 30 особей. Для молодняка есть специальные корма, но они питаются тем, что и взрослые раки. Это рыба, рыбная мука, сырой протеин, жир, комбикорм, каши, овощи.

 

Для контроля за качеством воды, её температурой, содержания в ней кислорода потребуется специальное оборудование.

Рентабельность бизнеса

Расходы

Подсчитаем наиболее выгодный вариант: разведение раков в искусственных бассейнах

• Пропиленовые бассейны, не подвергаются коррозии и влагоустойчивые. Стоят по 400$. 4 штуки это 1600 $.
• Аэратор, для поддержания уровня кислорода — от 400 $.
• Термометр, солимер — 100 $.
• Оксигенератор, необходим для повышения жизнеспособности молодняка — 1000$.
• Оксиметр — 500$.
• Корма на 6 месяцев около 300$.
• Маточное стадо 500 особей по 3$ = 1500$.

Итоговая стоимость порядка 5400-6000$.

Прибыль

Маточное стадо в 500 самок приносит в год ориентировочно 13000 молодняка. Это 4-5 тонн раков в год. Стоимость 1 кг раков самого маленького размера составляет 10$.
4000 кг * 10$ = 40000 $ выручки.

Идея более чем привлекательна в финансовом плане: определенно высокая доходность бизнеса в сравнении с относительно небольшими затратами и невысокой конкуренцией.

Мелкомасштабное разведение раков

Страница 1 из 2 • 1 2 Просмотр: 39, Ответы: 29 ». : Пол Хикс Флорида

раков можно выращивать везде, где в США вода не должна быть глубиной более фута, но чистая и с небольшой циркуляцией. небольшие пруды бассейны аквариумы им нужно меньше года, чтобы достичь размера стола. они также много разных видов раков. Есть также большой рынок для мягких раков. Павел Цитата | Сообщение № 8535 (1)

tuttimato 6 февраля 2010 г. 1:19 CST Имя: твигги Побережье Мексиканского залива Z8b

Привет Пол. Вам выпала сомнительная честь получить мой первый пост о локтях. Меня давно интересует аквакультура, как пресноводная, так и соленая. Несколько раз я почти занимался выращиванием раков, так как у меня есть два участка земли, которые были бы идеальными. Работа, а потом и инвалидность помешали. Теперь я живу в кресле с электроприводом, но я мог бы справиться с кроватью во дворе. Однажды мой агент по развитию прислал мне книгу о культуре. Он был толщиной 3/4 дюйма, и большая часть информации была получена от LSU. Он был приспособлен для коммерческого масштаба, чередующегося с рисовыми культурами. Я хотел бы услышать от людей, которые сделали это в небольшом масштабе. Спасибо за начало этого локтя. Цитата | Сообщение №12854 (2)

GRMESUE 7 февраля 2010 8:45 CST Имя: Sue Я тоже! Цитата | Сообщение №18823 (3) phicks 14 февраля 2010 г., 12:34 CST Имя: Пол Хикс Флорида Я только что купил книгу на ebay дешево. Мелкое разведение раков для еды и прибыли. в нем 50 страниц. много информации. paul Цитата | Сообщение № 38145 (4) starlight1153 18 февраля 2010 г. 7:05 CST 9.3b Мне тоже было бы интересно послушать и поучиться. Может быть, вы можете прочитать и поделиться, как вы читаете. Цитата | Сообщение № 50485 (5) Phicks 18 февраля 2010 3:50 вечера CST Наименование: Пол Хикс Флорида

насчитывается 350 видов раков. большинство ест растения и некоторые виды рыб, креветок и т. д. и т. д. Павел Цитата | Сообщение № 51782 (6)

starlight1153 18 февраля 2010 г. 16:04 CST 9.3b Zone8015

Внизу у железнодорожных путей, когда у нас бывают затяжные дожди и наводнения, через несколько дней можно увидеть, как люди сидят на маленьких стульчиках и ловят раков и раков. (думаю, они назывались одинаково, не уверен) Если бы я был по-настоящему голоден, я бы тоже охотился на них, но предпочел бы, чтобы они брались из более санитарного пруда. Я бы беспокоился о енотах, особенно о диких кошках, которые охотятся и поедают скот. Цитата | Сообщение № 51817 (7)

phicks 18 фев.0012

необходимо укрыть сеткой Цитата | Сообщение № 52372 (8)

Ridesredmule 23 февраля 2010 г. 13:20 CST 70

Вау!! я не мог бы поднять их, но я действительно хочу узнать, как вы это делаете. Научи нас, Павел…. Posin Mule Girls Charlie Charleen’s Critter Creations Цитата | Сообщение № 69861 (9)

phicks Feb 23, 2010 5:55 PM CST Name: Paul Hicks Florida

вот что почитать http://www.rampumps.com/craybook.htm Цитата | Сообщение № 71039 (10)

Ridesredmule 23 февраля 2010 г. 17:58 CST Имя: Чарлин Алфорд, Флорида Иди с миром.

очень интересно. Очень понравился синий, конечно, выглядел красиво, интересно, он готовит розовый??? Я не знал, что они ели траву, это то, что они говорят?? Мул Посин Девочки Чарли Творения Чарлин Криттер Цитата | Сообщение #71059(11)

phicks Feb 23, 2010 6:32 PM CST Name: Paul Hicks Florida

да они едят траву alge и другую рыбу . они все готовят приятный оттенок красного. Пол Цитата | Сообщение № 71225 (12)

Ridesredmule 23 февраля 2010 г. 18:34 CST Имя: Чарлин Алфорд, Флорида Иди с миром.

Я помню, когда я был ребенком, это тоже было давно, мы ходили в нашу канализационную канаву и пытались ловить раков. Жил в МО в маленьком городке. Мул Посин Девочки Чарли Творения Чарлин Криттер Цитата | Сообщение № 71234 (13)

phicks 23 февраля 2010 г. 18:56 CST Имя: Пол Хикс Флорида

я вырос в массовом использовании капской трески, чтобы поймать их на клюквенных болотах Цитата | Сообщение № 71299 (14)

Ridesredmule 23 февраля 2010 г. , 19:06 CST 7 Walk in Peace,3 Alford 99014

Было бы интересно. Твои были намного чище, чем мои. первый раз я когда-либо съел один. Мы на рыбалке с папой помогали нам наловить, заворачивали в грязь и пекли. Мул Посин Девочки Чарли Творения Чарлин Криттер Цитата | Сообщение № 71348 (15)

sws1957 26 февраля 2010 г. 19:37 CST Имя: Стив0037 Грин Коу Спрингс Любитель грибов

раки классные! У меня была пара в аквариуме на 55 галлонов. Их товарищами по аквариуму были два гольца, один 5-дюймовый китайский пожиратель водорослей. Пожиратель водорослей дрался с пожирателем водорослей не менее 4 раз в неделю. самка рака линяла.она не скрывалась и была убита пожирателем водорослей.через два дня шла борьба. когда я проснулась, меня ждал сюрприз.самец рака убил пожирателя водорослей, и накачать его в его пещеру. Стив Цитата | Сообщение №80962 (16)

phicks Feb 26, 2010 8:45 PM CST Name: Paul Hicks Florida

ютуб http://www.youtube.com/watch?v=GgIIctUlph5 Цитата | Сообщение №81147 (17)

Наездник 27 февраля 2010 г. 16:57 CST Имя: Чарлин Алфорд, Флорида Иди с миром.

Аккуратно!! Мне понравилось. Мул Посин Девочки Чарли Творения Чарлин Криттер Цитата | Сообщение № 83431 (18)

phicks 27 февраля 2010 г. 19:00 CST 9037 Флорида 90 Hicks0015

Стив, ты собираешь грибы? Цитата | Сообщение № 83810 (19)

Coconut 6 марта 2010 г. 7:17 CST Название: Мелисса Э. Кейс St. Croix, США. Могу ли я пользоваться детскими бассейнами KMart? Я просто не знаю, как я могу получить племенное поголовье здесь. Они не хотят, чтобы мы что-то импортировали! Но это в основном нормально. Теперь посмотрим на эти ссылки… Мелисса Цитата | Сообщение №102062 (20) Страница 1 из 2 • 1 2 « Вернуться к началу « Домашняя страница Cubits.org « Cray Fish And Fish Farming домашняя страница cubit « Cray Fish and Fish Farming forum Вы должны сначала создать имя пользователя и войти в систему, прежде чем вы сможете отвечать в этой теме.

Раки и рыбоводство Добро пожаловать в Раки и рыбоводство » Главная » Форумы

Исследование искусственной инкубации яиц Cherax quadricarinatus

• Список журналов
• Коллекция Elsevier для чрезвычайных ситуаций в области общественного здравоохранения
• PMC7273164

Аквакультура. 2020 15 декабря; 529: 735576.

Published online 2020 Jun 5. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735576

, ^{a, b} , ^b , ^b , ^b , ^b , ^{a , ⁎} и ^{b, ⁎}

Информация об авторе Примечания к статье Информация об авторских правах и лицензии Отказ от ответственности

Краснопалый рак, Cherax quadricarinatus , является экономически ценным пресноводным раком. Тем не менее, некоторые производственные препятствия, такие как низкая скорость вывода яиц и асинхронный вывод, препятствуют его развитию в отрасли аквакультуры. Искусственная инкубация яиц может решить эти проблемы. В данном исследовании изучалась технология искусственной инкубации яиц краснопалых раков. Были получены следующие результаты: 1) 75%-й спирт в качестве дезинфицирующего средства в течение 60 с оказывал предпочтительное антибактериальное действие и повышал скорость вывода; 2) плотность 300 и 600 яиц/инкубатор приводила к значительно более высоким показателям вывода и выживаемости, чем при плотности 900 яиц/инкубатор; 3) при плотности 600 яиц/инкубатор оптимальное количество сеток для прикрепления только что вылупившейся молоди составило 20 штук на инкубатор; 4) при плотности 600 яиц/инкубатор и 20 чистых штук/инкубатор вылупление составило 82,05% ± 4,09%, выживаемость 55,12% ± 7,51%, а всего 129 200 SPF (свободных от специфических патогенов) проростков. выращивались. Эту искусственную инкубационную систему поддерживали в состоянии, близком к асептическому, с отсутствием вируса белой точки, иридовируса, Vibrio и инфузории; это справедливо для всех используемых источников воды и для инкубации как икры, так и молоди раков. В заключение, если мы внедрим разумные методы дезинфекции, обнаружения SPF и выделения патогенов, а также используем оптимальную плотность яиц и системы инкубации, возможно крупномасштабное производство SPF рассады Cherax quadricarinatus .

Ключевые слова: Cherax quadricarinatus , Раки, Искусственная инкубация, Яйцо, SPF

Cherax quadricarinatus , широко известный как краснопалый рак, является экономически ценным пресноводным раком с выдающимися преимуществами и широкими перспективами для аквакультуры и развития (Jones, 1990; Zheng et al., 2019). Он произрастает в тропической северной Австралии и на юге Новой Гвинеи (Ghanawi and Saoud, 2012). Он может достигать высоких рыночных цен благодаря своему гастрономическому качеству и высокому спросу (Edgerton, 2005; Webster et al., 2002). С момента интродукции и пробного выращивания краснопалых раков в начале 19 в.В 90-х годах в Китае была разработана технология искусственного разведения в помещении (Gu et al. , 2003). Тем не менее, все еще существуют некоторые препятствия для индустриализации краснопалых раков, такие как низкая скорость вылупления и асинхронное вылупление.

Для решения этих производственных проблем можно использовать технологию искусственной инкубации. Это также позволяет лучше контролировать условия окружающей среды, такие как качество воды и распространенность хищников и болезней. Кроме того, он требует меньше места, энергии и труда и позволяет получать животных, свободных от афаномикоза (Jose et al., 19).99; Эдгертон, 1999 г.; Эванс и Эдгертон, 2002). Разработка этой технологии для производства раков уже давно привлекает внимание ученых и аквакультуристов многих стран (Jones and Valverde, 2020). В Китае Zhu et al. (2002) впервые попытались вывести яйца Procambarus clarkii in vitro, но их результаты показали значительно более низкую выводимость в искусственно инкубированных яйцах по сравнению с яйцами, прикрепленными к материнским плеоподам. В 21 веке исследователи успешно провели множество исследований по искусственной инкубации яиц раков и добились прорывов в области дезинфицирующих средств, методов инкубации, инкубационной системы и других компонентов. Что касается дезинфицирующих средств, большинство исследований показали, что формальдегид (1500–4500 частей на миллион, вводимый каждые 2–3 дня в течение 15–25 минут) может значительно контролировать рост грибков, убивать паразитов и улучшать выводимость (Celada et al., 2004). ; Мелендре и др., 2006 г.; Мелендре и др., 2007 г.; Ройуэла и др., 2009 г.; Антонин и др., 2010). Тем не менее, существуют опасения по поводу безопасности использования формальдегида из-за его предполагаемой канцерогенности и потенциального неблагоприятного воздействия на водную среду (Arndt et al., 2001). Обычное дезинфицирующее средство на основе 75% спирта может инактивировать большинство бактерий и вирусов (Lio-Po et al., 1982; Wang et al., 2013), включая коронавирус (COVID-19). Поэтому необходимо изучить его как дезинфицирующее средство при искусственной инкубации икры раков. Что касается методов и систем инкубации, Brian et al. (2001) применили подвесные апвеллеры для искусственной инкубации Cherax destructor яиц и достиг средней выживаемости 87%, что было равно или лучше, чем выживаемость, наблюдаемая при инкубации с материнской особью. Другие исследователи оценили искусственную инкубацию яиц раков в рециркуляционных системах и обнаружили, что такие системы позволяют успешно проводить искусственную инкубацию икры благородных раков ( Astacus astacus ) (Antonín et al., 2010; Antonín et al., 2011; Jones). и Вальверде, 2020 г.).

Целью настоящего исследования является изучение технологии искусственной инкубации икры краснопалого рака путем подбора дезинфицирующих средств и оптимизации технологического процесса. Результаты позволят создать технологию получения рассады SPF (свободной от специфических патогенов), которая подходит для производства C. quadricarinatus свободен от определенных патогенов.

Процесс искусственной инкубации включает дезинфекцию, инкубацию in vitro, обнаружение SPF и изоляцию возбудителя. Яйца были получены от самок C. quadricarinatus с плодами в Чжэцзянском институте пресноводного рыболовства, Хучжоу, Китай. Было задействовано 805 самок (вес 69,15 ± 11,04 г, длина тела 108,53 ± 12,44 мм, длина брюшка 53,75 ± 4,15 мм). У всех самок первого нереста, и все они одного возраста, качество икры в момент старта было одинаковым. Инкубационная система состояла из четырех основных компонентов: инкубатора ZISS (от компании Zissaqua в Корее, объем: 500 мл), озонового стерилизатора (мощность: 130 Вт, производство озона: 5 г/л), инкубатора (100 мл). × 40 × 40 см) и тепличный бассейн (площадь 13 м ² ) с трубопроводом для природного газа и трубой для накачивания, позволяющей нагревать воду в бассейне. Инкубатор ZISS был основным компонентом устройства; он мог удерживать яйца в состоянии непрерывного качения с контролируемым динамическим потоком воды по принципу гравитации. Яйца в инкубаторе ЗИСС находились в среде, богатой кислородом, а стабильный циркулирующий поток воды поворачивал их равномерно и мягко ( ). Семь инкубаторов помещали в инкубационный бак, а по десять инкубационных баков — в каждый бассейн теплицы. Для поддержания температуры воды как внутри, так и снаружи инкубационных емкостей на уровне 28–30 °С использовался природный газ. Для инкубации использовали один резервуар, а инкубационную воду дезинфицировали с помощью озонового стерилизатора каждый день в течение 2 ч. Воду в баке меняли через день.

Открыть в отдельном окне

Состав инкубатора ЗИСС. (а) Клапан регулирования кислорода. (b) Фильтрующая губка. (с) Выход. (d) Дугообразное дно. (е) Сукер. (е) Эйрстоун. Стрелки показывают вход воды, выход воды и маршрут зарядки кислородом в инкубаторе ZISS.

2.1. Эксперимент 1: изучение действия различных дезинфицирующих средств

Яйца осторожно отделяли от плеоподов с помощью гребенки, чтобы осторожно, но надежно отделить яйца от яйценосных щетинок, к которым они прикреплены, и непосредственно в чашку для культивирования, и стерилизовали различными дезинфицирующими средствами. . Работали 18 самок, яйца в каждом инкубаторе от 2 самок. Были протестированы три варианта лечения:

• —

  стерильная вода в течение 60 с в качестве контроля.

• —

  2000 частей на миллион формальдегида в течение 15 мин.

• —

  75% спирт на 60 с.

Затем яйца дважды промывали стерильной водой и растирали по 10 яиц из каждой группы с 200 мкл стерильной воды. Молотые яйца разбавляли в 100 раз и затем культивировали на кровяном агаре (для выявления аэробных и факультативно-анаэробных бактерий) и ТХБС (в основном для выявления Вибрио ). Через 24 часа подсчитывали количество бактерий для определения бактериостатического эффекта. Остальные яйца помещали в инкубатор. Воду, используемую для инкубации, дезинфицировали озоном, а яйца дезинфицировали 75%-ным спиртом в течение 60 с через день до начала вылупления. Температуру инкубационной воды поддерживали на уровне 28–30 °С. После вылупления подсчитывали количество молоди 1-й стадии. Определяли скорость вылупления (коэффициент вылупления = количество молодых особей на стадии 1/количество яиц). Было проведено три параллельных эксперимента при каждом условии дезинфицирующего средства.

2.2. Эксперимент 2: изучение влияния разного времени дезинфекции

Яйца отделяли от сот и стерилизовали 75% спиртом в течение разного времени дезинфекции. Работали 24 самки, яйца в каждом инкубаторе от 2 самок. Были протестированы четыре времени дезинфекции:

• —

  75% спирт в течение 10 с, 30 с, 60 с и 90 с.

Затем яйца дважды промывали стерильной водой и по 10 яиц из каждой группы использовали для определения бактериостатического эффекта в соответствии с этапами обнаружения, использованными в эксперименте 1. Остальные яйца инкубировали, следуя тем же этапам, что и в эксперименте 1. Наконец, была определена скорость вылупления. Для каждого времени дезинфекции проводили по три параллельных эксперимента.

2.3. Эксперимент 3: изучение влияния различной плотности яиц

Яйца отделяли от сот и стерилизовали 75% спиртом в течение 60 с. Простерилизованные яйца промывали стерильной водой, обогащенной кислородом, и помещали в инкубатор. Было занято 18 самок, икру в каждом инкубаторе от 1 до 3 самок. Были испытаны три плотности:

• —

  300, 600 и 900 яиц/инкубатор.

Протокол инкубации был таким же, как и в эксперименте 1. Наконец, количество молодых особей стадии 1 и стадии 3 было определено количественно. Были определены коэффициент вылупления и коэффициент выживаемости (коэффициент выживаемости = количество молодых особей на стадии 3/количество яиц). Для каждой плотности яиц проводили три параллельных эксперимента.

2.4. Эксперимент 4: изучение влияния кусочков сетки на вывод

Яйца отделяли от сот и затем стерилизовали 75% спиртом в течение 60 с. Простерилизованные яйца промывали стерильной водой, обогащенной кислородом, и помещали в инкубатор с плотностью 600 яиц/инкубатор. Использовали двенадцать инкубаторов, и в каждый инкубатор заранее добавляли кусочки сетки (2,0 × 2,0 см). Работали 24 самки, яйца в каждом инкубаторе от 2 самок. Было испытано четыре количества кусков сетки:

• —

  0, 15, 20 и 25 штук нетто на инкубатор.

Протокол инкубации был таким же, как и в эксперименте 1. Наконец, количество молодых особей стадии 1 и стадии 3 было определено количественно. Были определены показатели вылупления и выживаемости. Для каждого количества кусков сетки проводили три параллельных эксперимента.

2.5. Эксперимент 5: Генерация SPF (включая обнаружение SPF и выделение патогенов)

Все яйца отделяли от сот и стерилизовали 75% спиртом в течение 60 с. Простерилизованные яйца промывали стерильной водой, обогащенной кислородом, и помещали в инкубатор. Работала 721 самка, яйца в каждом инкубаторе от 2-х самок. Наконец, количество молодых особей стадии 1 и стадии 3 было определено количественно. Были определены показатели вылупления и выживаемости.

Мы провели SPF-детекцию на племенных раках, яйцах и инкубационной воде до и после дезинфекции; яйца и вода во время инкубации; и стадия 1 и стадия 3 несовершеннолетних. При этом в качестве контроля исследовали икру, воду, только что вылупившихся раков (мальки 1 стадии) и свободноподвижных раков (мальки 3 стадии) в период инкубации матери. Методы обнаружения были основаны на перечне болезней, связанных с креветками, Всемирной организации по охране здоровья животных (OIE), а также на отраслевых стандартах инспекции при въезде и выезде из Китая и карантинных отраслевых стандартах. Помимо распространенных болезней красноклешневых раков нами обнаружен вирус белой пятнистости, вирус радужной оболочки, Vibrio , инфузории и другие колонии; эти данные могут помочь предотвратить и изолировать вторжение эпидемических заболеваний. Все инкубационные устройства должны храниться в закрытом помещении. Инкубационная вода должна регулярно стерилизоваться озоновым стерилизатором и должна быть изолирована от других источников загрязнения. Следует избегать возможного перекрестного заражения, и люди не должны входить в закрытую зону инкубации в период культивирования. Во избежание эпидемии должны проводиться строгие процедуры дезинфекции.

2.6. Статистический анализ

Все данные представлены как среднее ± SD. Статистический анализ проводился с использованием программного обеспечения Statistica для Windows. Для всех статистических тестов значений P <0,05 считались значимыми.

3.1. Выбор лучшего дезинфицирующего средства

Результаты бактериостатического теста показали, что дезинфекция 75%-ным спиртом в течение 60 с оказала наилучшее антибактериальное действие, и яйца в этих условиях не несли Vibrio ( ). Через 7 дней инкубации яйца вылупились со следующими коэффициентами выклева: стерильная вода (65,29 ± 6,20)%, 75%-й спирт (88,11 ± 2,76)%, 2000 млн формальдегида (89,16 ± 5,08)%. Показатели вылупления яиц, продезинфицированных формальдегидом 2000 частей на миллион и 75% спиртом, были значительно выше, чем у яиц, продезинфицированных стерильной водой ( P  < 0,05), но не было существенной разницы между формальдегидом 2000 частей на миллион и 75% спиртом. ( P  > .05) ().

Открыть в отдельном окне

Антибактериальный эффект и эффект скорости вылупления различных дезинфицирующих средств. (A) Антибактериальный эффект различных дезинфицирующих средств. (а) Стерильная вода в течение 60 с в качестве контроля. (b) 2000 частей на миллион формальдегида в течение 15 мин. (c) 75% спирт в течение 60 с. Верхний ряд выявляли кровяным агаром; нижний ряд был обнаружен TCBS. (B) Скорость вылупления с различными дезинфицирующими средствами. Данные являются средствами троек. Столбики погрешностей представляют SEM. Столбцы, отмеченные разными буквами, существенно отличаются ( P  < 0,05).

3.2. Выбор наилучшего времени дезинфекции

Результаты показали, что 75% спирт в течение 60 с и 90 с обладал лучшим антибактериальным действием, чем другие дезинфицирующие средства ( ). Через 7 дней инкубации яйца вылупились со следующими показателями выклева: 75%-й спирт в течение 10 с (75,53 ± 2,56) %, 30 с (81,25 ± 4,34) %, 90 с (81,78 ± 4,88) %, 60 с (84,47) %. ± 1,71)%. Вылупление яиц, продезинфицированных 75% спиртом в течение 60 с, было значительно выше, чем у яиц, продезинфицированных 75% спиртом в течение 10 с (9).0737 P  < 0,05), и не было никаких существенных различий между другими группами ( P  > 0,05) ().

Открыть в отдельном окне

Антибактериальный эффект и скорость вылупления влияют на разное время дезинфекции. (A) Антибактериальный эффект разного времени дезинфекции. (а) 75% спирт в течение 10 с. (б) 75% спирт в течение 30 с. (c) 75% спирт в течение 60 с. (d) 75% спирт в течение 90 с. Верхний ряд выявляли с помощью кровяного агара, а нижний ряд выявляли с помощью TCBS. (B) Скорость вылупления разного времени дезинфекции. Данные являются средствами троек. Столбики погрешностей представляют SEM. Столбцы, отмеченные разными буквами, существенно отличаются ( P  < 0,05).

3.3. Выбор наилучшей плотности яиц

Результаты показали, что яйца вылупились через 7 дней инкубации и что через 16 дней яйца развились до стадии 3. Показатели вывода были следующими: 900 яиц/инкубатор (78,99 ± 3,15) %, 600 яиц/инкубатор (86,65 ± 3,09) %, 300 яиц/инкубатор (87,46 ± 3,63) %. Выживаемость была следующей: 900 яиц/инкубатор (50,67 ± 2,10) %, 600 яиц/инкубатор (57,05 ± 2,64) %, 300 яиц/инкубатор (57,81 ± 1,86) %. Показатели вылупления и выживаемости яиц, инкубированных при плотности 300 и 600 яиц/инкубатор, были значительно выше, чем у яиц, инкубированных при 900 яиц/инкубатор ( P  < 0,05). Не было существенной разницы в коэффициенте вылупления или выживаемости между плотностью 300 и 600 яиц/инкубатор ( P  > 0,05) ( ).

Открыть в отдельном окне

Вылупление и выживаемость при разной плотности яиц. Данные являются средствами троек. Столбики погрешностей представляют SEM. Столбцы, помеченные разными буквами, существенно различаются ( P  < 0,05).

3.4. Влияние разного количества кусков сетки

Результаты показали, что яйца вылупились через 7 дней инкубации и что через 16 дней яйца превратились в молодых особей 3-й стадии. Показатели вылупления были следующими: 0 шт. нетто (85,55 ± 3,11)%, 25 шт. нетто (85,57 ± 3,59)%, 15 шт. нетто (85,67 ± 5,01)%, 20 шт. нетто (86,29 ± 3,54)%; существенных различий между группами не было ( P  > 0,05). Показатели выживаемости были следующими: 0 чистых частей (52,37 ± 2,30) %, 25 чистых частей (60,75 ± 2,94) %, 15 чистых частей (61,64 ± 5,30) %, 20 чистых частей (63,19).± 4,72)%. Уровень выживаемости существенно не отличался между группами с 15, 20 и 25 кусочками сетки ( P  > 05), но показатели были значительно выше для всех этих групп по сравнению с таковой с 0 кусочками сетки ( P  < . 05). Вылупление и выживаемость группы с 20 сетками были самыми высокими при плотности 600 яиц/инкубатор ( ). Кроме того, яйца с плесенью были обнаружены в сердцевинных областях скоплений только что вылупившейся молоди только в 0 группах чистых кусков ().

Открыть в отдельном окне

Влияние разного количества частей сетки. (A) Скорость вылупления и выживаемость для разного количества чистых штук. Данные являются средствами троек. Столбики погрешностей представляют SEM. Столбцы, помеченные разными буквами, существенно различаются ( P  < 0,05). (B) Эффект чистых частей. (a) Группа 0 чистых кусочков, яйца с плесенью в сердцевине скоплений только что вылупившейся молоди. (b) Группа из 20 чистых кусочков, без заплесневелых яиц.

3.5. Поколение SPF

На основе предыдущих экспериментов мы провели крупномасштабные эксперименты. Яйца стерилизовали 75% спиртом в течение 60 с, промывали стерильной водой, обогащенной кислородом, и помещали в инкубатор. Во время инкубации воду дезинфицировали озоном, а яйца дезинфицировали 75% спиртом в течение 60 с через день. Результаты показали, что через 12–16 дней яйца превратились в молодь стадии 3. Показатели вылупления и выживаемости составили 82,05 ± 4,09.% и 55,12 ± 7,51 % соответственно, всего было выращено 129 200 саженцев SPF ( ).

Открыть в отдельном окне

Основные этапы создания SPF. (A) Яйцо зачистки. (B) Дезинфекция 75% спиртом в течение 60 с. (C) Стадия 1 несовершеннолетних. (D) Стадия 3 несовершеннолетних. (E) Управление инкубацией. (F) Ежедневная дезинфекция озоном. (G) Вирус белой точки, радужный вирус, Vibrio и другие обнаружение колоний.

Результаты SPF-обнаружения показали, что в процессе выведения in vitro вода, икра и молодь раков были близки к асептическому состоянию и не несли вирус белой пятнистости, иридовирус, Vibrio и инфузории, что свидетельствует о целесообразности проведения мероприятий по дезинфекции и изоляции наружных бактерий.

Процесс искусственной инкубации состоит из четырех ключевых компонентов: дезинфицирующее средство, плотность яиц, инкубатор и управление инкубацией.

Во-первых, большое влияние на вылупление оказывают дезинфицирующие средства. Грибковые инфекции, вызванные Saprolegnia и другими родственными оомицетами, представляют серьезную проблему для инкубируемой икры раков и могут привести к 100% гибели (Edgerton et al., 2002). Основными средствами решения этой проблемы в предыдущих отчетах были химические противогрибковые ванны или удаление мертвых и инфицированных яиц (Antonín et al., 2010). Хотя периодическое удаление мертвых яиц положительно влияло на скорость вывода за счет снижения роста грибов, это было трудоемко, а манипуляции могли привести к повреждению здоровых яиц (Celada et al., 2004; González et al., 2011). Таким образом, противогрибковая обработка, используемая в этом исследовании, представляла собой комбинацию химических противогрибковых ванн, дезинфекции инкубационной воды и периодического удаления мертвых яиц. В качестве химической противогрибковой ванны использовали 75% спирт в течение 60 с через день до начала вылупления, а воду для инкубации дезинфицировали озоном. Мы воспользовались небольшими размерами, легким весом и простотой эксплуатации инкубатора, чтобы регулярно аккуратно сливать мертвые яйца, плавающие на верхнем слое водной поверхности инкубатора. Напротив, в большинстве предыдущих исследований формальдегид использовался для химических противогрибковых ванн (Celada et al., 2004; Melendre et al., 2006; Melendre et al., 2007; Royuela et al., 2009).; Антонин и др., 2010). Кроме того, Lio-Po et al. (1982) сообщили, что алкоголь оказывает микостатическое действие при очень высоких концентрациях. Результаты этого исследования показали, что 75% спирт на 60 с является эффективной альтернативой химической противогрибковой ванне формальдегиду.

Во-вторых, мы проверили плотность яиц. Селада и др. (2004) сообщили, что показатели эффективности, полученные в их экспериментах, сильно зависят от плотности яиц. Ройэла и др. (2009) сообщили, что мертвая икра раков является хорошим субстратом для Сапролегния spp. и другие оомицеты. Гифы были способны распространяться от зараженных яиц к окружающим здоровым, и это было более серьезной проблемой при более высокой плотности яиц. В соответствии с результатами Celada et al. (2004) и Royuela et al. (2009), это исследование показало, что показатели вылупления и выживаемости при плотности яиц 300 и 600 эмбрионов/инкубатор были значительно выше, чем при плотности 900 эмбрионов/инкубатор ( P  < 0,05).

Брайан и др. (2001) предположили, что инкубатор должен имитировать плеоподы самок раков. Когда самки насиживают яйца на своих плеоподах, они постоянно двигают плеоподами, чтобы «обмахивать» яйца; это обеспечивает постоянный источник пресной воды и связанного с ней кислорода для яиц. Поэтому мы использовали подвесную систему для подвешивания яиц в столбе движущейся воды. Мы сочли эту систему эффективной, поскольку она обеспечивала хорошее обеспечение яиц пресной водой и кислородом и отделяла яйца от поверхностей, которые могли способствовать бактериальным или паразитарным инфекциям. Кроме того, система инкубации, использованная в этом исследовании, поддерживала яйца в состоянии непрерывного вращения с контролируемым динамическим потоком воды по принципу гравитации.

Наконец, еще одним важным фактором успеха инкубации было управление инкубацией. Мы сосредоточились на двух следующих моментах. Во-первых, дезинфекция яиц и инкубационной воды и периодическое удаление мертвых яиц гарантировали успешную инкубацию. Во-вторых, инфицированные яйца постоянно становились основными участками скоплений только что вылупившейся молоди, что является наиболее вероятным объяснением их последующей гибели. Вылупившиеся раки естественным образом склонны прикрепляться к щетинкам материнских плеопод (Vogt, Tolley, 2004), но этот субстрат недоступен при искусственной инкубации. Таким образом, использование соответствующего количества чистых частей имеет решающее значение. В этом исследовании яйца с плесенью были обнаружены в сердцевине скоплений только что вылупившейся молоди только в группах с 0 чистыми кусочками. Кроме того, показатели выживаемости в группах с 15, 20 и 25 частями сетки были значительно выше, чем в группе с 0 частями сетки (9).0737 P  < 0,05). Мы предполагаем, что это произошло из-за того, что агрегация молодых особей на стадии 1 после вылупления привела к аноксической гибели других яиц или молодых особей, или вылупление не было синхронным, первые вылупившиеся молодые особи прикрепились к невылупившимся яйцам, что привело к гибели и появлению плесени. яиц. Поэтому, чтобы улучшить выживаемость и скорость вывода, необходимо было поместить в инкубатор кусочки сетки в качестве насадки. Более того, показатели вылупления и выживаемости группы с 20 штуками сетки были самыми высокими при плотности 600 яиц/инкубатор, поэтому 20 штук сетки на инкубатор было наиболее подходящим числом для прикрепления 600 только что вылупившихся мальков9.0015

Грибковые (т. е. Psorospermum ) и бактериальные инфекции, а также простейшие (т. е. Epistylis ) и многоклеточные паразиты ограничены внешней стороной яйца. Следовательно, если яйца отделить от самки и их наружную поверхность стерилизовать, их можно инкубировать отдельно от матери, чтобы получить детенышей, свободных от специфических патогенов (SPF) (Rudge and O’Sullivan, 2007). Rudge и O’Sullivan (2007) сообщили, что самки раков не передают вирусы яйцам; скорее, вирусы были переданы после вылупления яиц или, точнее, после того, как молодые особи начали питаться. Следовательно, производство рассады SPF может контролировать распространение болезни из источника рассады, что может повысить безопасность сохранения зародышевой плазмы и улучшить качество рассады. В связи с этим мы рассмотрели технологию искусственной инкубации в течение 9 лет.0737 C. quadricarinatus яиц и применили эту технологию в крупномасштабном производстве рассады SPF с положительными результатами. Мы также обнаружили, что синхронизация инкубации проростков SPF, культивируемых по технологии инкубации, была высокой. Это выгодно для производства, потому что всю молодь можно легко выпустить в пруды одинакового веса и возраста, что приводит к меньшему каннибализму и точному знанию количества молоди, зарыбленной в каждом пруду.

Рынок красной клешни растет, поэтому требуется более эффективное управление инкубаторием (Ghanawi and Saoud, 2012). Будущие исследования должны расширить подход до коммерческого уровня. Мы должны сочетать водные знания с физическими и механическими знаниями. Кроме того, лучше эффективно имитировать колебание яйценосных плеопод самок раков. Инкубатор AquaVerde, описанный в статье Jones and Valverde (2020), может быть хорошим выбором.

В этом исследовании мы определили целесообразный метод дезинфекции (75% спирт в течение 60 с через день до начала вылупления), плотность яиц (600 яиц/инкубатор), метод инкубации (обеззараживание воды для инкубации озоном в течение 2 ч через день; замена воды в резервуаре через день; и использование 20 кусочков сетки/инкубатор для прикрепления) и инкубационной системы (с инкубатором ZISS в качестве основного компонента). Мы также добились обнаружения SPF и изоляции возбудителей (близких к асептическому состоянию и свободных от вируса белой пятнистости, иридовируса, Vibrio и инфузории), а всего было выращено 129 200 проростков SPF. Это первое применение этой искусственной инкубационной системы для разведения краснопалых раков и сохранения новой зародышевой плазмы.

Это исследование было одобрено Комитетом по этике Центра лабораторных животных Чжэцзянского университета (Zju201306-1-11-060).

CHENG shun, JIA Yong-yi, CHI Mei-li, LIU Shi-li, ZHENG Jian-bo, WANG Dan-li, GU Zhi-min придумали и разработали эксперименты. ЧЭН Шун, Цзя Юн-и, ЧИ Мэй-ли, ЧЖЭН Цзянь-бо, ЛЮ Ши-ли проводили эксперименты. CHENG shun, JIA Yong-yi, CHI Mei-li проанализировали данные. ВАН Дань-ли, ГУ Чжи-минь руководили проектом. ЧЭН Шун, Цзя Юн-и, ВАН Дан-ли, ГУ Чжи-мин написали статью. Все авторы прочитали и одобрили рукопись.

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Эта работа выполнена при финансовой поддержке Национальной ключевой программы исследований и разработок Китая (Грант № 2018YFD05) и Открытого проекта Ключевой лаборатории здоровой пресноводной аквакультуры Министерства сельского хозяйства и Ключевой лаборатории генетики и селекции пресноводной аквакультуры провинции Чжэцзян, Китай (ZJK201903) при поддержке KC Wong Magna Fund в Университете Нинбо.

• Антонин К., Хосе М.С., Милош Б., Ян М., Томаш П., Павел К. Искусственная инкубация благородных раков ( Astacus astacus ) яйца в частично рециркуляционной системе с использованием формальдегида в качестве противогрибковой обработки. Аква. Рез. 2010;41:618–623. [Google Scholar]
• Антонин К., Хамид Н., Ирина К., Милош Б., Павел К. Ультрафиолетовый свет и полурециркуляционные системы в искусственной инкубации икры благородных раков ( Astacus astacus ): возможности и ограничения. Аква. Рез. 2011: 1–8. [Google Scholar]
• Арндт Р.Э., Вагнер Э.Дж., Рутледж М.Д. Сокращение или прекращение обработки перекисью водорода на критической стадии развития радужной форели: влияние на глазчатую икру, вывод, деформацию и борьбу с грибком. Н. Ам. Дж. Аквак. 2001; 63: 161–166. [Академия Google]
• Брайан В.Л., Уилсон А.Л., Даниэль Г.К.А. Метод испытания эффективности искусственной инкубации икры по сравнению с высиживанием самки у пресноводных раков Cherax destructor (Decapoda: Parastacidae) Аквакультура. 2001; 195: 299–309. [Google Scholar]
• Селада Дж. Д., Каррал Дж. М., Ройуэла М. С., Мелендре П. М., Агилера А. Влияние различных противогрибковых средств на искусственную инкубацию яиц астацидных раков ( Pacifastacusleniusculus Dana). Аквакультура. 2004;239: 249–259. [Google Scholar]
• Эдгертон Б.Ф. Болезни краснопалого пресноводного рака. Аква. Маг. 1999; 25:26–38. [Google Scholar]
• Эдгертон Б. Производство пресноводных раков для борьбы с бедностью. Всемирная аквакультура. 2005; 36:48–64. [Google Scholar]
• Эдгертон Б.Ф., Эванс Л.Х., Стивенс Ф.Дж., Оверстрит Р.М. Краткий обзор болезней пресноводных раков и комменсальных организмов. Аквакультура. 2002; 206: 57–135. [Google Scholar]
• Эванс Л.Х., Эдгертон Б.Ф. Глава 10. Патогены, паразиты и комменсалы. В: Холдич Д.М., редактор. Биология пресноводных раков. Блэквелл Сайенс Лтд.; Оксфорд: 2002. стр. 377–438. [Академия Google]
• Ганави Дж., Сауд И.П. Линька, репродуктивная биология и управление инкубатором красноклешневых раков Cheraxquadricarinatus (von Martens 1868) Аквакультура. 2012; 358–359: 183–195. [Google Scholar]
• González A., Celada J.D., Melendre P.M., Carral J.M., Royuela M.S., Gonzalez B., García V. Влияние различных обработок бронополом на конечную выживаемость при искусственной инкубации яиц раков ( Pacifastacus leniusculus , Astacidae) Aquac. Рез. 2011: 1–5. [Академия Google]
• Gu Z.M., Xv G.X., Huang X.M., Liu Q.W., Mi G.Q. Искусственное разведение и уход за молодью в помещении Cherax quadricarinatus . Дж. Фиш. Китай. 2003;27(1):32–37. [Google Scholar]
• Джонс С.М. Департамент первичной промышленности; Квинсленд, Брисбен, Австралия: 1990. Биология и потенциал аквакультуры тропических пресноводных раков, Cherax quadricarinatus. QI. [Google Scholar]
  Джонс С.М., Вальверде К. Разработка технологии массового производства красноклешневых раков, Cherax quadricarinatus . Пресноводные раки. 2020; 25:1–6. [Google Scholar]
  Хосе Р.П., Хосе М.К., Хесус Д.К., Камино М., Мария С. Р., Хуан И.А. Возможности искусственной инкубации икры белокоготных раков ( Austropotamobius pallipes Lereboullet): сравнение материнской и искусственной инкубации. Аквакультура. 1999;170:29–35. [Google Scholar]
  Lio-Po G.D., Sanvictores M.E.G., Baticados M.C.L., Lavilla C.R. Влияние фунгицидов in vitro на рост гиф и спорогенез Lagenidium spp. выделен из личинок Penaeus monodom и Scylla serrata яиц. Дж. Фиш Дис. 1982; 5: 97–112. [Google Scholar]
  Мелендре П.М., Селада Дж.Д., Каррал Дж.М., Ройуэла М.С., Агилера А. Эффективность противогрибковых обработок при искусственной инкубации яиц сигнальных раков ( Pacifastacus leniusculus Dana. Astacidae) Аквакультура. 2006; 257: 257–265. [Google Scholar]
  Мелендре П. М., Селада Дж. Д., Каррал Дж. М. Влияние частоты удаления молоди на стадии 2 на конечную выживаемость при искусственной инкубации яиц раков ( Pacifastacus leniusculus Dana Astacidae) J. Shellfish Res. 2007; 26: 201–203. [Google Scholar]
  Royuela M.S., Melendre P.M., Celada J.D., Carral J.M., Gonzalez A., Gonzalez R., García V. Возможности искусственной инкубации икры сигнальных раков ( Pacifastacus leniusculus Dana) при высокой плотности и сниженном потоке используют формальдегид в качестве противогрибкового средства. Аквакультура. 2009; 288: 65–68. [Google Scholar]
  Радж Э., О’Салливан Д. Инкубатор для яиц дает большие надежды для красных когтей. Аквакульт Австралии. 2007; 6: 26–37. [Академия Google]
  Фогт Г., Толли Л. Уход за расплодом пресноводных раков и связь с сенсорными нарушениями потомства. Дж. Морфол. 2004; 262: 566–582. [PubMed] [Google Scholar]
  Ван Х., Ляо К.Дж., Ян Д.З., Xv X., Лю Дж. Исследование дезинфицирующего эффекта и срока действия 75% этанола. Междунар. Дж. Биол. 2013;36(4):182–184. [Google Scholar]
  Webster C.D., Thompson K.R., Muzinic L.A., Rouse D.B., Manomaitis L. Выращивание и питание красноклешневых раков, Cherax quadricarinatus . Аква. Маг. 2002; 28:34–38. [Google Scholar]
  Zheng J.B., Cheng S., Jia Y.Y., Gu Z.M., Li F., Chi M.L., Liu S.L., Jiang W.P. Молекулярная идентификация и профили экспрессии четырех сплайс-вариантов полового летального гена у Cherax quadricarinatus . Комп. Биохим. Физиол. 2019; 234 (Часть Б): 26–33. [PubMed] [Google Scholar]
  Zhu Y.F., Cui Y.H., Ge ZQ, Xv Y.X. Сравнительное исследование вылупления Procambarus clarkii с удерживанием яиц и без них. Дж. Гидроэкол. 2002;22(4):16–17. [Академия Google]

  Превратите свой неэкологичный бассейн в биологически активную и привлекательную рыбную ферму!

  Может ли преобразование плавательных бассейнов в рыбоводные пруды стать еще одним способом повышения продовольственной безопасности, когда мы приближаемся к пику добычи нефти?

  
  Пермакультурный рыбный пруд в разработке

  Плавательные бассейны пользуются плохой репутацией в окружении, и не зря. Их строительство стоит очень дорого — в процессе используется много материалов с интенсивным выбросом CO2 — они тратят огромное количество воды и энергии на техническое обслуживание, используют химикаты, чтобы содержать их в чистоте и «безопасности», и они занимают много места, что можно использовать для более продуктивных целей (например, для выращивания овощей!). Многие люди также считают, что за ними много работы, что особенно раздражает, когда они часто используются в лучшем случае только сезонно.

  Но что, если вы уже запутались в бассейне и пытаетесь извлечь из ситуации максимальную пользу? Может быть, он пришел с вашей собственностью, или задним числом вышло после того, как вы выложили тысячи, чтобы установить то, что вы почти никогда не используете…. Что тогда?

  Некоторые просто сливают свой бассейн с водой и на этом останавливаются. Хотя это вариант, он не особенно привлекателен, и внутренняя часть бассейна все равно потребует периодической подметания и очистки, если вы хотите избежать поднятых бровей со стороны вашей свекрови и других гостей.

  Вы можете что-нибудь сделать? Есть ли способ использовать бассейн, сохраняя при этом эстетику и, возможно, даже принося с собой какие-то другие преимущества?

  Пару дней назад я зашел в дом Ванессы Фернандес (бывшей студентки PDC Джеффа) и Джастина Шармана на Золотом побережье Австралии, чтобы проверить дошедший до меня слух об их преобразовании в бассейн. Это был увлекательный визит!

  
  Пермакультурные сады и бассейн прекрасно сочетаются друг с другом

  Видите ли, около восемнадцати месяцев назад, после небольшого размышления и исследования, Ванесса и Джастин решили лучше использовать большую водяную яму на заднем дворе. Его решили превратить в биологически активный пруд для разведения рыбы!

  Работа еще продолжается, но уже, на мой взгляд, серьезно улучшенная версия того, что было раньше. Если переоборудование бассейна в пруд выполнено правильно, эстетика может значительно улучшиться, и вы также можете получить регулярную поставку свежей рыбы без химикатов для кухни.

  Еда из бассейна, похоже, была не основной целью Ванессы и Джастина, а скорее созданием замкнутой биологической системы, которая добавила бы красоты и разнообразия остальной части их системы пермакультуры.

  Как они это сделали

  После осушения бассейна приступили к его очистке от загрязнений, протирая внутреннюю часть уксусом и ополаскивая начисто. Это важно, иначе рыба, которую вы вводите, может умереть. Однако перед введением рыб необходимо установить растения, а также все важные водоросли, генерирующие кислород. Водоросли образуются сами по себе, когда это разрешено, и лучше всего вводить растения, которые вы найдете в естественных пресноводных средах в вашем районе (озера, пруды, реки), поскольку они лучше всего подходят для вашего климата. Джастин и Ванесса даже представили пару растений, которые многие государственные органы считают «вредителями», например, сальвинию, быстрорастущий плавающий папоротник. Это растение служит не вредителем, а кормом для цыплят, а его способность быстро распространяться означает, что у цыплят его достаточно!

  Другим интродуцированным растением является азола, которая очень богата азотом из-за его особых взаимоотношений с азотфиксирующей цианобактерией. Это делает его исключительно хорошей мульчей (говорят, что азолла значительно увеличивает урожай риса — «на целых 158 процентов в год»). Конечно, они также представили растения, которые отлично подходят для употребления в пищу человеком, такие как канконг, водяной каштан и кресс-салат.

  
  Перевернутый ящик в воде действует как платформа для самоспасения цыплят, в случае
  одна курица толкает другую (назло), и несчастной жертве нужен обратный путь

  На данный момент в бассейне обитает около дюжины серебристых окуней («размером с тарелку», — сказал Джастин. «Примерно 4-8 кг. веса рыбы»). Это уроженцы региона. Мальки, которых вы можете видеть ниже, жуют хлеб, который мы бросили, чтобы соблазнить более крупных парней, которые любят зависать в более глубокой воде. Я надеялся, что они могут придумать импровизированную фотосессию. Взрослые сделали вид, но они, должно быть, серьезно стесняются камеры, так как они только бросятся на хлеб и исчезнут до того, как мой указательный палец вообще успеет сдвинуться. Поскольку у нас было еще одно неотложное задание, я потратил на это всего несколько минут, так что простите меня за то, что я не предоставил изображение конечного «продукта». Думаю, это очередная история про рыбу, которая уплыла…

  
  Закуска для детенышей рыбы на хлебе, который был брошен для привлечения более крупной рыбы дальше вниз

  В настоящее время бассейн представляет собой биологическую систему с замкнутым контуром. Растения питаются питательными веществами, поступающими из рыб и птичьего помета, рыбы питаются растениями и личинками насекомых (например, стрекоз и т. д.), а водоросли регулируют уровень CO2/кислорода. Зоопланктон и моллюски (улитки) питаются водорослями, ракообразные (креветки) питаются зоопланктоном, а рыбы питаются моллюсками и ракообразными.

  О, говоря об улитках, если кто-то заметил синие шланги наверху и подумал, что я действительно должен был вытащить их, прежде чем делать какие-либо снимки, пусть знает, что я собирался сделать именно это, но меня остановили. Эти шланги тоже служат определенной цели — улитки цепляются снаружи, а также живут внутри шланга, и именно из этих шлангов рыбам нравится кормиться.

  Как уже упоминалось, водоросли очень важны для здоровья бассейна, но их может быть слишком много. Следует избегать цветения водорослей, поскольку они могут задушить жизнь в бассейне. Сбалансированную популяцию водорослей можно регулировать тремя способами: 1) уменьшить поступление питательных веществ (т. е. поймать немного рыбы), 2) уменьшить количество света (т. е. добавить полупрозрачную тень или живую лиану над частью бассейна) или 3) просто выкопайте немного водорослей, если вы в отчаянии, и используйте их для мульчи или компоста.

  Больше всего останавливает приличный рост популяции рыб кислород. Чтобы регулярно есть из бассейна, Ванессе и Джастину необходимо будет установить систему фильтрации/оксигенации воды, что они планируют сделать в будущем. Как вы можете видеть на фотографиях, вода в этом конкретном пруду довольно «естественная». Биологический фильтр сделал бы воду более прозрачной, так что, если бы вы захотели, она по-прежнему могла бы сохранить первоначальное предназначение бассейна (плавание!). Повышенная оксигенация также имеет тенденцию удерживать водоросли от выхода из-под контроля.

  Биофильтр не обязательно должен быть слишком сложным или дорогим. Воду можно откачивать из бассейна через гравийную траншею, а затем обратно в бассейн (можно использовать солнечный насос). Когда вода проходит через гравий, она фильтруется/очищается (с помощью водорослей, которые там разовьются) и насыщается кислородом. Камыши, растущие на гравии, помогают сделать сам биологический фильтр замкнутой системой.

  Наряду с общей эстетикой и потенциалом повышения продовольственной безопасности и здоровья такие бассейны также способствуют здоровью сада в целом, поскольку они привлекают большее разнообразие диких животных. Ванессу и Джастина теперь регулярно посещают хищные существа, в том числе белолицые цапли и даже австралийская выпь, вид, находящийся под угрозой исчезновения.

  По сути, такой бассейн является прекрасным примером самой сути пермакультуры — работы с природными синергиями и поиска способов заставить их работать на нас самих и на окружающую среду. Там, где современный агробизнес концентрируется на химии, пермакультуристы занимаются биологией. Вместо редукционистской науки, которая брала бы всего один элемент и разделяла бы его на основные химические ингредиенты, прежде чем мы взглянем вверх, думая, что что-то понимаем, этот тип управления использует более широкий взгляд.

  Это напоминает мне отличный отрывок, который хорошо доносит эту мысль до сознания:

  Работа с живыми существами, как растительными, так и животными, отличает сельское хозяйство от любого другого производственного предприятия. Несмотря на то, что продукт производится, в сельском хозяйстве процесс совсем не промышленный. Это биологическое. Мы имеем дело с жизненно важной, живой системой, а не с инертным производственным процессом. Навыки, необходимые для управления биологической системой, аналогичны навыкам дирижера оркестра. Все музыканты очень хороши в том, что они делают индивидуально. Роль дирижера состоит не в том, чтобы играть на каждом инструменте, а в том, чтобы поддерживать союз разрозненных частей. Дирижер координирует усилия каждого музыканта с усилиями всех остальных и объединяет их в гармоничное целое.

  Сельское хозяйство не может быть промышленным процессом больше, чем музыка. Это следует понимать иначе, чем штамповка этого металла в форме или смешивание этих химикатов и реагентов для создания этого соединения. Основные работники — почвенные микроорганизмы, грибы, минеральные частицы, солнце, воздух, вода — все являются частями системы, и не только использование одного из них, но и координация всего добивается успеха. – Элиот Коулман, Новый органический производитель, стр. 3, 4.

  Задний двор Джастина и Ванессы — это не только продуктивный сад пермакультуры, но и очень красивая среда обитания диких животных. Я думаю, что моя камера и я должны заглянуть снова когда-нибудь….

  Ресурсы:

  Джастин дал мне несколько ресурсов, которые они сочли полезными для своего пула:

  • https://www.biofilters.com/webfilt.htm — то, что делает биофильтр
  • https://www.beadfilters.com/downloads/printablecalc.pdf — некоторые моменты, которые необходимо учитывать при выборе размера биофильтра
  • https://www.scielo.br/scielo.php?pid=S1519-69842002000400019&script=sci_arttext – «водяной гиацинт – это один из многих видов растений, которые мы используем в качестве биофильтра с низким воздействием. прекрасный компост на основе грибов. Мы также используем азолу».

   

  Разведение раков: от спаривания до вылупления | Крабы | Блог

  Чтобы иметь возможность использовать Garnelio RU в полном объеме, мы рекомендуем активировать Javascript в вашем браузере.

  Главная

  Закрыть меню Пересекать

  6 апреля 2018 г. 0 комментариев

  Beitrag teilen:

  Когда осенью температура воды падает, происходит спаривание. Во время этого процесса самки удерживаются самцами когтями и переворачиваются на спину или в боковое положение. Самки сотрудничают, когда готовы к спариванию, поэтому даже гораздо более мелкие самцы могут спариваться с физически превосходящими самками. Во время этого спаривания самцы своими гоноподами прикрепляют к самке маленькие белые палочковидные сперматофоры толщиной около миллиметра. Обычно они находятся вентрально между последними ходячими ногами или на хвостовом веере.

  Непосредственно перед спариванием между партнерами происходит контакт путем прикосновения или определенных движений когтями. Иногда можно наблюдать попытки спаривания между самцами, что может быть связано с тем, что у одного из животных регенерировали и поэтому маленькие, довольно плаксивой формы когти. Эксперименты с Procambarus clarkii показывают, что у этого вида контакт также осуществляется химическим путем.

  Агрессивность некоторых самцов и относительная пассивность самок особенно важны при первом столкновении животных. Можно было заметить, что самки отвергают «жестоких» самцов.

  Дальнейший контакт обеспечивает сексуальную стимуляцию пассивных животных и снижение агрессивного поведения потенциальных партнеров. Только так возможно спаривание. В начале спаривания самец захватывает партнершу когтями и старается перевернуть ее на спину или бок. Ходильными ногами он обхватывает тело самки и пытается таким образом ее удержать. В этом процессе помогают седалищные крючки у основания ног самца, которые служат органами захвата. Если попытка успешна, вентральные стороны партнеров обращены друг к другу, и может начаться спаривание. Во время этого процесса сперма направляется из семявыносящего протока в один из первых двух гоноподов и переносится вторым гоноподом, который действует как поршень. Первый гонопод проникает в вентральное кольцо. Небольшое отверстие тела на нижней стороне самки. Давление второго гонопода откладывает сперму в эту перматотеку.

  Спаривание длится примерно 15 минут, после чего самку отпускают. Вскоре после спаривания, обычно через несколько часов, самка счищает задними ходильными ногами щетинчатую кайму на плавательных ногах брюшка и затем начинает откладывать яйца. У других родов самка также может длительное время хранить сперму и лишь в более позднее время происходит откладка яиц. У самок Orconectes откладка яиц может занять до восьми месяцев.

  Во время яйцекладки брюшко выдвигается к заднему краю головогруди, образуя своего рода выводковую камеру. В эту лонжеронную камеру выделяется слизь из белковых желез. Эта слизь образует эластичную кожу, как только она вступает в контакт с водой. Самка ложится на бок или на спину, и яйца выходят из гонопор в эту слизистую палатку. Теперь сперматозоиды высвобождаются из вентрального кольца и происходит оплодотворение яйцеклеток. Благодаря постоянному биению перепончатых ножек и собственному весу яиц каждое яйцо прочно прикрепляется к плеоподам стеблем или нитью, канатиком, а слизь затвердевает. Яйца, которые не оплодотворены или не прикреплены к канатику, обычно поедаются самкой. Затем самка возвращается в нормальное положение.

  За прикрепленными яйцами на брюшке матери тщательно ухаживают. Делается это с одной стороны ритмичными движениями перепончатых лапок, благодаря чему яйца постоянно омываются и вымываются кислород и побочные продукты метаболизма. С другой стороны, они тоже очищаются от нечистот механически своими ходильными ногами. В это время самки почти не покидают своего укрытия и едят очень мало или совсем ничего.

  При вылуплении яйцевая капсула разрывается, но остается прикрепленной к самке нитью. На этой стадии Cambaridae не так развиты, как Astacidae; последние обычно вылупляются на одну личиночную стадию раньше. Птенец дополнительно соединяется с матерью тельсоновой нитью (филогенетический признак раков) на внутренней оболочке яйца. Если детеныш случайно отрывается, он цепляется за существующие структуры материнского брюшка крючками когтей особой формы.

  Происходят три личиночные стадии: на первой стадии у вылупившихся уроподов нет уроподов, а панцирь увеличен за счет желточного мешка. Когда это истощается, линька приближается ко второй стадии. После этой линьки птенцы все еще остаются прикрепленными к брюшку. Кроме того, феромоны заставляют молодых крабов оставаться привязанными к матери. После линьки до третьей стадии появляются уроподы, и молодь начинает двигаться все более свободно.

  Поскольку раки каннибалы, бывает, что некоторые из них поедаются сородичами, даже братьями и сестрами. Особенно в аквариумном содержании дело доходит в первое время, когда животные часто сбрасывают кожу, к большим потерям.

   

  За несколько дней до спаривания самка уже занята подготовкой и очищает плеоподы и нижнюю часть между ходильными ногами двумя последними парами ходильных ног. За день до спаривания самец также находится в брачном настроении, по-прежнему ведет себя агрессивно по отношению к самке и преследует ее. За восемь часов до спаривания агрессивное поведение снижается, и самец начинает нежно трогать и ласкать самку своими усиками. Непосредственно перед спариванием оба партнера демонстрируют этот нежный ритуал с антеннами, когда самка ложится ей на спину, а самец забирается на самку сверху.

  Затем самка сворачивает брюшко, а самец прикрывает его своим брюшком. Самец откладывает сперму (маленькие белые капельки, называемые сперматофорами) на нижнюю часть живота самки или между последней парой ходильных ног. Затем они расходятся, и самец уходит. Самка остается на спине еще несколько минут, выделяя студенистое вещество, которое стекает в полость, образованную вдавленным брюшком, и покрывает плеоподы (слизистую палатку). Затем голубоватые яйца выбрасываются и направляются в эту гелевую упаковку. Самка возвращается в нормальное положение, сложив хвост, и ищет укрытие. Примерно через 18 часов слизистая палатка растворяется, и яйца прикрепляются к волоскам плеопод.

  Однако при спаривании парастацидов наблюдалось другое поведение, когда самка играла доминирующую роль в брачном ритуале. Это связано с тем, что самка пытается положить самца на спину, чтобы сесть на него. Также могут быть большие различия в продолжительности спаривания, которое иногда занимает не более минуты. Спаривание обычно происходит ближе к вечеру или ночью. Сроки выхода яиц также сильно различаются и не обязательно происходят сразу после спаривания. Самка может ждать часы, дни или недели, прежде чем начать нерест.

  Источник: пресноводные раки со всего мира — Крис Лухауп/ Рейнхард Пекни

  Garnelio.de

  Категории

  BLEIBE Immer -IMMER.

  Подпишитесь СЕЙЧАС на нашу бесплатную рассылку новостей и присоединяйтесь к сообществу Garnelio.

  Функциональный

  Активный Неактивный

  Функциональные куки-файлы созданы для функциональных возможностей интернет-магазинов. Diese Cookies ordnen Ihrem Browser eine eine eindeutige zufällige ID zu damit Ihr ungehindertes Einkaufserlebnis über mehrere Seitenaufrufe hinweg gewährleistet werden kann.

  Session:

  Das Session Cookies speichert Ihre Einkaufsdaten über mehrere Seitenaufrufe hinweg und ist somit unerlässlich für Ihr personliches Einkaufserlebnis.

  Merkzettel:

  Das Cookie ermöglicht es einen Merkzettel sitzungsübergreifend dem Benutzer zur Verfügung zu stellen. Damit bleibt der Merkzettel auch über mehrere Browsersitzungen hinweg bestehen.

  Gerätezuordnung:

  Die Gerätezuordnung hilft dem Shop dabei für die aktuell aktive Displaygröße die bestmögliche Darstellung zu gewährleisten.

  CSRF-токен:

  CSRF-токен Cookie trägt zu Ihrer Sicherheit bei. Es verstärkt die Absicherung bei Formularen gegen unerwünschte Hackangriffe.

  Токен для входа:

  Токен для входа в систему, указанный в zur sitzungsübergreifenden Erkennung von Benutzern. Das Cookie enthält keine personnlichen Daten, ermöglicht jedoch eine Personalisierung über mehrere Browsersitzungen hinweg.

  Cache Ausnahme:

  Das Cache Ausnahme Cookie ermöglicht es Benutzern individuelle Inhalte unabhängig vom Cachespeicher auszulesen.

  Cookies Active Prüfung:

  Das Cookies wird von der Webseite genutzt um herauszufinden, ob Cookies vom Browser des Seitennutzers zugelassen werden.

  Cookie Einstellungen:

  Das Cookie wird verwendet um die Cookie Einstellungen des Seitenbenutzers über mehrere Browsersitzungen zu speichern.

  Herkunftsinformationen:

  Das Cookies speichert die Herkunftsseite und die zuerst besuchte Seite des Benutzers für eine weitere Verwendung.

  Aktivierte Cookies:

  Speichert welche Cookies bereits vom Benutzer zum ersten Mal akzeptiert wurden.

  PayPal:

  Das Cookie wird für Zahlungsabwicklungen über PayPal genutzt.

  Amazon Pay:

  Das Cookie wird für Zahlungsabwicklungen über Amazon eingesetzt.

  Partnerprogramm:

  Das Cookie dient dazu hervorgerufenen Umsatz von Directlinks von Anderen Plattformen umsatztechnisch auszuwerten.

  Landerkennung:

  Das Cookie wird für das Merken der Spracherkennung im Shop genutzt.

  Exit Popup:

  Das Cookie wird verwendet um das schließen einer Promotion (z.B. Popup) für eine bestimmte Zeit zu speichern, damit die Promotion nicht ständig neu erscheint.

  Stripe:

  Das Cookie wird vom Zahlungsanbieter genutzt um die Sicherheit bei der Abwicklung von Zahlungen auf der Webseite zu erhöhen.

  Маркетинг

  Активный Неактивный

  Маркетинговые куки-файлы предназначены для веб-сайтов, а также отдельных веб-сайтов для более крупных сайтов и браузеров.

  Facebook Pixel:

  Das Cookie wird von Facebook genutzt um den Nutzern von Webseiten, die Dienste von Facebook einbinden, personalisierte Werbeangebote aufgrund des Nutzerverhaltens anzzeigen.

  Активный Неактивный

  Google Conversion Tracking:

  Google Conversion Tracking Cookie wird genutzt um Conversions auf der Webseite effektiv zu erfassen. Diese Informationen werden vom Seitenbetreiber genutzt um Google AdWords Kampagnen gezielt einzusetzen.

  Активный Неактивный

  Google AdSense:

  Cookie-файлы Google AdSense для резервирования веб-сайта на веб-сайте.

  Активный Неактивный

  releva. nz Ретаргетинг:

  Файлы cookie, предназначенные для персонализации.

  Активный Неактивный

  Отслеживание

  Активный Неактивный

  Отслеживание Cookies helfen dem Shopbetreiber Informationen über das Verhalten von Nutzern auf ihrer Webseite zu sammeln und auszuwerten.

  Google Analytics:

  Google Analytics wird zur der Datenverkehranalyse der Webseite eingesetzt. Dabei können Statistiken über Webseitenaktivitäten erstellt und ausgelesen werden.

  Активный Неактивный

  Bing Ads:

  Das Bing Ads Tracking Cookie wird verwendet um Informationen über die Aktivität von Besuchern auf der Website zu erstellen und für Werbeanzeigen zu nutzen.

  Активный Неактивный

  Служба

  Активный Неактивный

  Служебные куки-файлы используются Nutzer zusätzliche Angebote (z. B. Live Chats) на веб-сайте zur Verfügung zu stellen. Informationen, die über diese Service Cookies gewonnen werden, können möglicherweise auch zur Seitenanalyse weiterverarbeitet werden.

  SmartSupp:

  SmartSupp stellt eine Live Chat Anwendung für Seitenbenutzer zur Verfügung. Über das Cookie Wird die Funktion der Anwendung über mehrere Seitenaufrufe hinweg sicher gestellt und Statistiken zur Benutzung der Webanwendung erstellt.

  Активный Неактивный

  Этот веб-сайт использует файлы cookie, чтобы предоставить вам наилучшую возможную функциональность и улучшить наше онлайн-предложение для вас.

  Как выращивать раков в домашних условиях

  Содержание статьи

  • 1 Сколько растут раки
  • 2 Где разводить раков
  • 3 Как разводить раков в домашних условиях
  • 4 Видео: разведение раков в домашних условиях

  Разведение раков – кропотливое занятие, требующее много терпения и времени. Люди разводят раков для себя или на продажу. Если вы любите морепродукты и хотите вдоволь полакомиться раками, то площадь для разведения животных не должна быть большой. Если вы хотите разводить раков с целью получения дохода, то вам необходимо более внимательно подойти к этому вопросу и найти подходящее помещение. Кстати, разведение раков – довольно прибыльный бизнес. Раки ценятся многими гурманами, которые готовы платить большие деньги за качественный продукт. В России эта отрасль не развита и занять нишу не составит труда. Главное — создать условия, при которых рак будет расти, толстеть и прекрасно себя чувствовать.

  Сколько растут раки

  Хочу отметить, что разведение раков дело долгосрочное. Рак с момента рождения вырастает до максимальных размеров к 4 годам. Поэтому нужно быть готовым к тому, что первую прибыль вы получите не раньше, чем через пару лет с начала выращивания раков. И все это время их нужно будет кормить и содержать.

  Где разводить раков

  Естественная среда обитания раков – небольшие водоемы, не замерзающие зимой. Вода в них не нуждается в фильтрации – проточный пруд обеспечивает животных всем необходимым – оптимальной для жизни температурой и питанием. Однако найти такой природный водоем довольно сложно. Даже если вы живете на приусадебном участке, выкопать пруд будет недостаточно. Зимой все раки просто погибают от мороза. Поэтому, создавая условия для разведения раков, нужно учитывать особенности их жизни. Итак, где можно держать раков?

  1. В бассейне. Этот способ подойдет тем, у кого на участке есть собственный бассейн. Вам также придется отказаться от купания в нем на ближайшие несколько лет, так как раки растут достаточно долго. Бассейн следует разделить на две части. В одной части будут жить взрослые раки, а в другой – молодняк. Это делается для того, чтобы взрослые и крепкие особи не съели молодых раков. Как только рак становится сильным и готов перейти во «взрослый» пул, его перемещают.
  2. В аквариуме. Для разведения раков аквариум должен быть очень большим. Потому что нет смысла разводить 10 или 20 особей, нужно вырастить не менее 200 раков, чтобы получить ощутимый результат. Если вы хотите разводить раков в аквариуме, вам нужно купить емкость не менее 500 литров. Также нужно организовать регулярную фильтрацию воды, обеспечивающую нормальную жизнедеятельность раков. В любом жилом помещении для раков необходимо создать оптимальную температуру. Какое бы место для разведения животных вы ни выбрали, температура не должна опускаться ниже нуля градусов по Цельсию, иначе раки погибнут. Если удастся устроить для раков температуру +15 градусов — отлично. В этом случае они не будут зимовать и перестанут расти.
  3. В подвале. Некоторые успешно выращивают раков в подвале. Какая? Это очень удобно. Большая площадь позволяет разместить довольно большие чаны или аквариумы с раками. Летом в подвале всегда прохладно, а зимой не холодно. Если вы хотите сымитировать природную среду, вам нужно посыпать дно емкости водой с песком. Также поместите в чан камни, за которыми любят прятаться раки.
  4. В приложении. Если вы живете не в квартире, а в загородном доме, то выращивать раков можно в любой пристройке. Для этого случая подойдет даже самый разваленный сарай. Здесь главное, чтобы внутри не было холодно, особенно зимой. Утепляйте пристройку и спокойно разводите там раков.

  Как разводить раков в домашних условиях

  Итак, место для разведения животных выбрано. Что дальше? Разберемся по порядку.

  1. Сначала нужно купить два-три больших контейнера. Они должны быть стеклянными (аквариумы) или пластиковыми. Железные чаны лучше не ставить; раки в таких условиях не приживаются. Резервуары должны быть оборудованы системой фильтрации, т.е. сливом. Сливное отверстие необходимо закрыть сеткой, чтобы не пострадал ни один рак.
  2. Чтобы различать раков по возрасту, нужно несколько чанов. После того, как в пруду родятся молодые рачки, взрослых нужно отсадить. Не пересаживайте малышей, потому что они не готовы адаптироваться к новой среде. А вот те, кто достиг определенного возраста, уже могут обустроиться на новом месте. Лучше всего разделить раков на три возраста – взрослых, средних молодых и очень мелких рачков. Пересадка раков по возрасту производится вручную, визуально на глаз.
  3. Купить раков можно в виде личинок и взрослых особей. Если вы решили купить взрослых раков, нужно знать, что на одного самца приходится две самки. Интересно, что самец оплодотворяет двух самок, а третью убивает, поэтому пропорции должны быть именно такими. Лучше всего покупать раков осенью, когда наступает период спаривания. Они дадут вам новое потомство, которое вы уже будете выращивать с нуля.
  4. Хочу отметить, что в воде, где содержатся мелкие рачки, фильтрация должна быть максимально тщательной. Молодые особи настолько малы, что могут просочиться даже через сеть – так можно потерять часть вылупившегося потомства.
  5. Еще раз хочу обратить внимание на то, что температура воздуха и воды должна быть комфортной. Если температура не опускается ниже 15 градусов, раки растут быстрее и имеют более крупные размеры.
  6. Чем кормить раков? В естественной среде раки питаются чем угодно – растениями, падалью, органическими соединениями, лягушками, мелкой рыбой, червями, личинками. В искусственной среде можно подкормить их тем же составом. Однако, чтобы облегчить себе жизнь и не находиться постоянно в поисках личинок и рыбы, можно добавить в рацион вареные каши (крупы), овощи, корм для рыб, мясо, цельнозерновые культуры.
  7. Освещение для раков большой роли не играет. Только одна лампочка осталась постоянно включенной.
  8. Раки линяют несколько раз в год, то есть сбрасывают свой старый панцирь. В это время они достаточно уязвимы для других взрослых. Поэтому нужно внимательно следить за питанием раков, чтобы они не съели своего «беззащитного» сородича.
  9. Выгоднее всего разводить синих раков. Они более мясистые, кроме того, быстрее растут и набирают вес.

  Раки могут заболеть инфекционными заболеваниями или пострадать от паразитов. Все отклонения от нормы происходят из-за неправильного содержания животных. Очень важно вовремя менять ракам воду, не перекармливать их, не давать сырое мясо, обеспечивать правильную температуру для комфортной жизни.

  При разведении раков придется потратиться на самих животных, емкости для воды, систему фильтрации, а также корма. Но больше всего нужно приложить внимание и терпение. При разведении раков не бывает так, что бросил раков в чан и ждал прибыли. Чтобы получить реальный результат, нужно любить это дело и отдавать ему все свое время. И тогда вы сможете не только наслаждаться вкусным и нежным мясом, но и получать немалый доход.

  Видео: разведение раков в домашних условиях

  Рекомендуем читать

  Белопалый рак | CrayfishSurveys.com

  Введение
  

  Белопалый рак — единственный вид раков в Ирландии. В настоящее время считается, что в Ирландии находятся одни из лучших европейских запасов этого вида, которым меньше всего угрожают внешние факторы. Считается, что ирландские запасы имеют существенное значение для сохранения. На протяжении всего естественного ареала в Западной Европе распространение и численность белокоготных раков резко сократились за последние 150 лет из-за антропогенных нарушений, таких как чрезмерный вылов рыбы, разрушение среды обитания, загрязнение и интродукция чужеродных видов раков. В Великобритании североамериканские сигнальные раки были завезены в аквакультуру, а затем сбежали в дикую природу, где оказали разрушительное воздействие на белокоготных раков. Хотя этот вид не был зарегистрирован в Ирландии, существует реальная угроза того, что этот чужеродный вид раков достигнет Ирландии. Раковая чума, которая передается интродуцированными видами раков и вызывается грибком Aphanomyces astaci был обнаружен в Ирландии с конца 1980-х годов.

  Белопалый рак в реке Лиффи

  Жизненный цикл и характеристики белокоготного рака

  Раки являются крупными подвижными пресноводными беспозвоночными и считаются ключевыми видами, где бы они ни встречались. Они растут медленно по сравнению с другими астацидами и достигают общей длины 9 см и веса 40 г за пять и более лет. Их предельная длина составляет, возможно, 12 см. Раки растут за счет линьки своего панциря и увеличения примерно на 10% в длину до того, как новый затвердеет. Неполовозрелые раки могут линять несколько раз в год, но половозрелые самцы обычно линяют дважды, в начале и в конце лета. Репродуктивные самки линяют только один раз, в конце лета.

  Тело гладкое, обычно от коричневого до оливкового цвета, с ямками. У белокоготных раков есть острый шип на плече панциря, которого нет у сигнальных раков, и это хороший способ различить два вида. У взрослых самцов когти больше, чем у самок, и они более территориальны, особенно в брачный период. У самок развивается более широкое брюшко, вмещающее выводок. Самцов также можно отличить от самок по специализированным первым двум парам придатков на нижней стороне брюшка. Придатки функционируют как поршень, вводя белый сперматофор на нижнюю сторону самки во время спаривания.

  Спаривание происходит в октябре-ноябре при температуре воды около 10ºC, во время которого самцы обездвиживают самок своими когтями и откладывают белый сперматофор на основание своих ходильных ног. Брюшные придатки самок более опушены, чем у самцов, и служат для поддержки массы яиц, которая приклеивается к ним после откладки. Количество несущих яиц может варьироваться от 20 до 160, но обычно меньше 100. Такие самки описываются как «ягодные» и зимуют со своей кладкой. Около 50% выживают, чтобы вылупиться в июне или июле. Птенцы остаются привязанными к матери до второй линьки, когда они становятся независимыми. Затем самка может возобновить кормление и линьку. Наличие молоди указывало бы на здоровую гнездовую популяцию белокоготных раков. Раки могут жить более 10 лет и обычно достигают половой зрелости через три-четыре года.

  Самцы (справа) и самки белопалых раков из озера Блессингтон

  Места обитания

  Белопалые раки могут встречаться в различных местах обитания, таких как реки, каналы, ручьи и озера. Их можно найти в самых разных субстратах, если есть подходящие убежища. Используются такие убежища, как валуны, скалы и булыжники, корни деревьев, растительность и т. д. Молодь обычно находится между сорняками и мусором на мелководье. Белопалые раки в основном ведут ночной образ жизни, хотя их можно увидеть кормящимися на мелководных берегах озер с приближением сумерек теплыми летними вечерами.

  Пресноводным ракам требуется относительно жесткая вода с высоким содержанием кальция. При этом жизненные требования к белокоготным ракам аналогичны кумжи, при хорошем качестве воды. Однако исследования теперь показывают, что раки в Ирландии могут переносить некоторое загрязнение. В ирландских исследованиях раки чаще всего обнаруживались в незагрязненных водах, но также были обнаружены в слегка загрязненных и умеренно загрязненных водах. Некоторые популяции были обнаружены даже на участках с очень низким качеством воды.

  Влияние выпаса раков на водные макрофиты известно давно, их выпас снижает первичную продуктивность, а в их отсутствие может наблюдаться буйный рост макрофитов. В ирландских озерах белокоготные раки охотятся на самых разнообразных донных беспозвоночных, включая улиток, ракообразных и личинок насекомых. Раки всех видов, по-видимому, предпочитают животную пищу растительной. В Уайт-Лейк, графство Уэстмит, где были повторно интродуцированы белокоготные раки, сеголетки питались в основном мелкими энтомостракановыми ракообразными и личинками насекомых. Более крупные раки в этом озере питались преимущественно камышами, в то время как самый крупный зарегистрированный экземпляр питался как мертвой наземной растительностью, так и молодыми раками.

  Личинки стрекоз и крупные раки могут быть значительными хищниками молодых белокоготных раков. Другие хищники включают цапель, лососевых, угрей, окуня и щуку. Раки играют важную роль в рационе выдр.

  Белопалый рак из озера Килруски

  Охранный статус

  Этот вид в настоящее время находится под угрозой из-за интродуцированного сигнального рака Pacifastacus leniusculus , который превосходит их в конкуренции. Хотя этот американский вид еще не достиг Ирландии, он является переносчиком раковой чумы, вызываемой (грибками) оомицетом 9.1457 г. Афаномицеты астаци. Эта болезнь достигла ирландских вод и уничтожила ранее известные запасы белокоготных раков

  Белоклапанные раки по-прежнему широко распространены в реках ирландского среднегорья, где геология преимущественно состоит из известняка. Однако с середины 1980-х годов распространение белокоготных раков в реках ограничено. Частично это было связано со вспышкой раковой чумы, вызванной грибком Aphanomyces astaci 9.1458 . Также сообщалось, что популяции раков в озерах и реках водосбора Бойн, вероятно, пострадали от раковой чумы. Однако этот эффект географически изолирован. В водоемах, включая Лох-Оуэл, произошла крупная необъяснимая смертность раков.

  Основными угрозами белокоготному раку в Ирландии являются дренаж и обслуживание дренажа, загрязнение и внедрение хищников, конкурентов или болезней. Европейские раки не обладают устойчивостью к Aphanomyces astaci грибок, способный полностью уничтожить поголовье раков за несколько недель. Этот гриб прикрепляется к тонким участкам кутикулы в виде споры, а затем прорастает через ткани, что приводит к смерти примерно через две недели. Затем плавающие споры передаются непосредственно от инфицированных или недавно умерших раков. Это заболевание привело к искоренению раков в ирландских озерах, включая Лох-Лен и Лох-Уайт.

  Добавить комментарий Отменить ответ

  Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

  Комментарий *

  Имя *

  Email *

  Сайт

  Поиск:
  Рубрики
  • Бизнес
  • Вложения
  • Готовый
  • Идеи
  • Покупатели
  • Разное
  • Расчеты
  • С нуля
  • Советы
  • Средний
  • Франшиза