Новые технологии выращивания форели в Дании
Дания, крупный производитель европейской форели, 15 лет назад приняла новые экологические законы, ограничивающие воздействие на окружающую среду со стороны рыбоводных хозяйств.
Производителям форели пришлось разработать новые технические решения, что обеспечить свои объемы производства. Больше всего за прошедшее время подверглись изменениям корма (экструдирование, увеличение энергетического уровня кормов, уменьшение количества фосфатов). Попутно разрабатывались новые экологические производственные методы.
Различные участники этого сектора экономики в течение нескольких лет работали совместно, разрабатывая проект «экспериментальной фермы».
Рыбоводные фермы имеют собственную систему очистки оборотной воды, что максимально уменьшает потребление воды из водоисточника до 5 % (река, скважина или дренаж).
При подпитке свежей водой в объеме130 л/с, на ферме выращивается 1000 тонн форели в год.
Кормление рыбы осуществляется при помощи автокормушек, которые наполняются раз в день.
Система аэрации эффективно поддерживает насыщение воды кислородом на уровне 70 -90 %.
В дополнение к аэрации, воздушные диффузоры создают постоянный ток воды в системе.
Для аэрации используются компрессора с давлением 0,3 бар. Предусмотрена система аварийной подачи воздуха и энергоснабжения при перебоях в снабжении электричеством.
Механическая очистка воды производится двумя способами:
- сбор крупных частиц более 100 мкм – осадочными конусами,
- от 100 мкм до 75 мкм барабанными микрофильтрами.
Собранные осадки отводят на поля орошения, с последующим вывозом осадка на поля в качестве удобрений.
В системе предусмотрена биологическая фильтрация оборотной воды, соотношение площади загрузки / объему загрузки — несколько сот квадратных метров/ на куб. Загрузка биологического фильтра — фиксированная или свободная, полиэтилен.
Удачно решена в системе проблема очистки сбросной воды от нитратов и фосфора. При замене воды излишек сливается в проточные водоемы с болотной растительностью, которая усваивает их из воды. Очищенная вода повторно используется в водообмене рыбоводной фермы. При расходе чистой воды 100 л/с, требуется примерно 5000 квадратных метров водно – болотистых водоемов.
К преимуществам следует отнести быстрый монтаж всего комплекса сооружений, на возведение и запуск фермы в эксплуатацию требуется около 5 месяцев.
Рассматривается возможность монтажа систем этого типа в закрытом варианте со зданием из сендвич-панелей.
Предусмотрена предпродажная выдержка готовой товарной продукции, в отдельной системе со своим водообменом.
На сегодня построено около 50 таких ферм, в том числе и на реконструируемых старых прудовых рыбоводных хозяйствах.
Объем выращиваемой готовой товарной продукции этих ферм составляет 50 % от всей выращиваемой форели в Дании. Планируется довести объем готовой продукции на хозяйствах этого типа к 2012 году до 80 %.
Основные преимущества:
- Низкое водопотребление
- Низкое воздействия на окружающую среду,
- Стабильность и контроль параметров системы,
- Увеличения производительности труда за счет очень высокой механизации производства
- (ферму мощностью 300 тонн форели в год может обслуживать 1 человек).
Технология выращивания посадочного материала форели в установке с замкнутым циклом водообеспечения
- Подробности
Просмотров: 18739
Технология выращивания посадочного материала форели в установке с замкнутым циклом водообеспечения
Условия культивирования форели в УЗВ. Выращивание рыб в ин- дустриальных условиях в отличие от традиционных форм рыбоводства не требует больших земельных площадей и водных ресурсов, обеспе- чивает значительную рыбопродукцию на единицу объема воды рыбо- водной емкости (200 кг/м3), до минимума сводит потери комбикорма, позволяет довести выработку на одного рабочего до 100 т товарной ры- бы в год. Кроме того, выращивание рыбы данным способом поддается управлению вплоть до полной автоматизации всех процессов, позволяет создавать как целые рыбоводные комплексы, так и отдельные установ- ки, которые можно использовать в условиях любых отраслей и произ- водств в виде подсобных хозяйств для получения товарной продукции.
При разработке нормативов для УЗВ основное внимание было уделено выращиванию посадочного материала рыб. Материалы и нор- мативы по форели получены на установке «Биорек» 1977–1983 гг., в основу которой положен вращающийся погружной биофильтр.
Особенности выращивания радужной форели в УЗВ. Своеобразие условий, создаваемых в установках с замкнутым циклом водоснабже- ния, отражаются на скорости роста и развития радужной форели. Соз
дание оптимального температурного, газового, химического режимов в большей степени раскрывает потенцию роста и на определенных эта- пах развития рыб стимулирует созревание половых продуктов. В усло- виях естественного хода температуры воды в регионах традиционного форелеводства на выращивание 40–50 г посадочного материала для форели уходит до 240–300 суток, в условиях установок с замкнутым циклом водоснабжения требуется не более 170 суток.
Особенностью условий УЗВ для форели является то, что еще не создано конструкций, в которых осуществлялось бы охлаждение воды в летний период, поэтому УЗВ используются в традиционные сроки работы форелевых питомников, но с менее продолжительным техноло- гическим циклом благодаря оптимизации абиотических факторов.
В дальнейшем посадочный материал предполагается использовать в нагульных хозяйствах и, таким образом, сокращать продолжитель- ность выращивания товарной форели до одного календарного года.
В перспективе благодаря применению в конструкции УЗВ тепло- вых насосов, способных как охлаждать, так и подогревать воду, при- менение установок по выращиванию форели станет двухцикличным в течение календарного года (табл. 28).
Ввиду того что нагрузка биомассы форели на экосистему УЗВ су- щественно ниже, чем по карпу, ввиду большей требовательности к ка- честву воды и менее эффективной работы биофильтра при оптималь- ной температуре для форели, выращивание товарной рыбы в УЗВ экономически нецелесообразно.
При содержании радужной форели в условиях УЗВ в течение пол- ного годового цикла в возрасте годовиков средняя масса рыб может достигать 1–1,5 кг. Все самцы в этом возрасте (12–14 месяцев) и при таких весовых кондициях обычно бывают половозрелыми. Самки до 80% от общего количества также бывают половозрелыми. Общая сум- ма градусо-дней к этому моменту достигает 4000 и более, что доста- точно для созревания рыб. Надо отметить, что для завершения созре- вания и получения качественных половых продуктов необходимо устроить период пониженной до 6–8oС температуры воды длительно- стью 35–50 суток (сумма 300 градусо-дней).
После получения зрелых половых продуктов следует перевести производителей на выращивание при температуре воды 14–16oС. Через 150–170 суток (2200–2500 градусо-дней) при проведении преднересто- вого содержания по указанной ранее схеме можно получить новую партию половых продуктов.
В привязке к прогрессивной схеме эксплуатации УЗВ это будет выглядеть следующим образом (табл. 29).
В условиях УЗВ применение сбалансированных кормовых смесей рецептур РГМ-5В, РГМ-8П, РГМ-6М, ФЭС-М позволяет выращивать физиологически полноценную рыбу.
Радужная форель способна переносить недлительные повышения концентрации общего аммония, нитратов выше допустимых значений, но при этом температура воды, кислорода и рН должны соответство- вать жизненным потребностям рыб (табл. 30).
Технические условия выращивания посадочного материала форели в установке с замкнутым циклом водоснабжения ВНИИПРХ–СПИАГУ. Технология разработана с использованием установки ВНИИПРХ– СПИАГУ мощностью 10 т для выращивания посадочного материала карпа. В измененной технологической схеме предусматривается в пер- вом цикле выращивать в декабре–мае посадочный материал форели в количестве 1,5 т, во втором цикле – товарного канального сома в коли- честве 2,5 т. Применяя прогрессивную технологию с тепловым насо- сом, за два цикла выращивания можно получить 3 т сеголетков форели средней массой 40–50 г. Если эти нормативы использовать в 50-тонной УЗВ для выращивания посадочного карпа, то на ней можно выращи- вать до 20 тонн посадочного материала форели.В состав базовой установки (потенциальная производительность 3 т, одного цикла – 1,5 т) входит следующее оборудование (табл. 31).
Одна аналогичная установка, эксплуатируемая в полицикличном режиме, может обеспечить посадочным материалом производственные мощности нагульного хозяйства в объеме товарной продукции около 20–25 т/год.
Технология выращивания посадочного материала форели в УЗВ. В условиях эксплуатации УЗВ особо возрастают требования к качеству воды (табл. 34).
Таблица 34
В период выращивания допускается 150–200%-ное насыщение во- ды кислородом. При этом рН, температура воды измеряются через 1–3 ч в течение суток, все остальные показатели – два раза в сутки.
Корма. Для кормления молоди форели используются корма РГМ- 6М и РГМ-5В с разным размером крупки (гранул) (табл. 35).
Таблица 35
Суточная доза корма задается в соответствии с табличными дан- ными (табл. 36).
Таблица 36
Специально для УЗВ разработана рецептура комбикорма ФЭС-М, который заменяет корм РГМ-6М. Специфичность ФЭС-М – это повы- шенный прирост биомассы рыб при снижении в воде уровня загряз- няющих веществ на 20%. Кормовой коэффициент составляет 0,9–1. Промышленные партии не выпускаются. Рецептура ФЭС-М приводит- ся в табл. 37.
Выращивание молоди форели в УЗВ. Производителей форели при выдерживании в течение 7–14 дней при температуре 6–8oС до получе- ния половых продуктов не кормят. Кислородный режим поддерживают 100–110%-ные насыщения барботажем и подачей кислорода после ок- сигенатора. Плотность посадки производителей составляет 10 шт/м3. Обычно содержат двойной запас производителей: 30 самок и 10 самцов.
Для получения 43 тысяч икринок необходимо иметь 15 самок и 5 самцов (3 : 1). Применяют общепринятую методику взятия половых
продуктов, осеменения и оплодотворения. Воду очищают через фильт- ры из клиноптилолита NO–3, NH+4.
Применяют следующие рыбоводно-биологические нормативы при инкубации икры (табл. 38).
Поднявшиеся на плав личинки кормятся в течение трех суток в лотковых аппаратах, затем они переводятся в емкости для выращивания.
По завершении выращивания молодь сортируют и переводят в адап- тационный бассейн, где температуру воды понижают при градиенте до 1oС/сут., т. е. до температуры, необходимой при перевозке. Некоторые нормативы выращивания радужной форели представлены в табл. 39.
Окончание табл. 39
Форель » FISH-AGRO | Проектирование и поставка оборудования для рыборазведения в УЗВ
Для инкубации цист артемии используют конусовидные сосуды вместимостью 200 литров (можно и меньше, конечно). Высокое содержание кислорода и перемешивание яиц в аппарате осуществляется путем аэрации воды с помощью компрессора, распылители которого устанавливаются в донной части аппарата. Над аппаратами обеспечивается постоянное интенсивное искусственное освещение. Для инкубации активированные яйца артемии помещают в 4–5%-ный раствор поваренной соли (NaCl). Плотность закладки яиц зависит от их качества и размера и составляет в среднем 4–5 г/л. В инкубационном аппарате необходимо поддерживать температуру 27–29 °С, рН 7,5–8,5. При этих условиях выклев науплий происходит через 24–30 ч после закладки яиц.
По завершении инкубации на 15 мин выключается свет и компрессор. В результате оболочки всплывают вверх, а науплии концентрируются в нижней части аппарата. После этого через сливной кран сначала сливаются мертвые и непроклюнувшиеся цисты (скапливающиеся в нижней конической части), а затем в мешок из газ-сита (114 мкм) сливают науплий. Полученных науплий либо сразу скармливают, либо помещают в бассейны с 3–5%-ным раствором соли для дальнейшего подращивания, либо замораживают.
Рекомендуется проводить предварительную обработку (активацию и декапсуляцию) яиц артемии перед их инкубацией. Яйца артемии покрыты хитиновой оболочкой, которая значительно снижает процент выхода рачков из яиц при инкубации. Кроме того, необходимо будет отделять выклюнувшихся науплий от мертвых яиц и пустых оболочек, что может быть не так просто. Декапсулированные эмбрионы более калорийны и энергичны, так как они не расходуют энергию на разрыв хитиновой оболочки. А успешно проведенная декапсуляция иногда позволяет обойтись вообще без инкубации яиц.
Активация способствует прерыванию диапаузы яиц и повышению процента выхода личинок (стоит отметить, что у яиц, продающихся в магазинах в товарной упаковке, этот процесс уже прерван). Она напоминает им холодную зиму, после которой они быстрее выйдут из своей скорлупы, а также дадут лучший процент «всхожести».
Существуют следующие способы активации яиц артемии:
1. Сухие яйца кладутся в раствор поваренной пищевой или аптечной морской соли (35–47 г/л) и промораживаются при температуре –15–20 ºС в течение одной-двух недель, затем в раствор бросают таблетку гидроперита, далее через 20–30 мин яйца промывают под краном водопроводной водой (5–10 с).
2. Сухие яйца кладутся в раствор поваренной пищевой или аптечной морской соли (35–47 г/л) и промораживаются при температуре –25 ºС в течение 1–2 мес.
3. Сухие яйца кладутся на 30 мин в 3%-ный раствор перекиси водорода (50 г яиц на 1 л раствора), промываются и кладутся в инкубатор. Это лучший способ активации при отсутствии морозильника.
4. Сухие яйца кладутся на 2 ч в пресную воду, имеющую температуру 25–30 ºС, далее отцеживаются и помещаются на сутки в раствор поваренной пищевой или аптечной морской соли (35–47 г/л). Данная операция повторяется три раза.
5. Если нет возможности проморозить яйца при температуре –25 ºС, то можно положить их в морозильник в солевом растворе, приготовление которого описано выше, на срок от одного дня до двух месяцев перед инкубацией.
При кормлении артемией рыб, планируемых на нерест, лучше всего подойдет второй вариант, с промораживанием не менее двух месяцев. После активации в морозильнике яйцам дают 3–4 дня отстояться при комнатной температуре перед инкубацией.
Методика декапсуляции цист артемии
Для улучшения технологии выклева артемии используют декапсуляцию. Метод декапсуляции цист артемии изначально применялся только для исследовательских целей, а позднее был широко внедрен в промышленную аквакультуру. Рыбоводами-практиками по достоинству была оценена возможность массового получения лишенных оболочек цист артемии в качестве стартового корма, обладающего отличными биохимическими характеристиками.
Декапсуляция – растворение хориона при сохранении живого зародыша – технологический прием, который может дать сильный импульс продвижению хозяйственного освоения артемии, поскольку эта операция резко улучшает показатели использования цист: делает излишним отделение науплий от скорлупы и неразвившихся цист, повышает «всхожесть» цист, жизнестойкость и энергетическую ценность науплий, дает гарантию от привнесения с кормом болезнетворного начала
и др.
Декапсуляция цист, выполненная перед инкубацией, имеет несомненные достоинства получения науплий из нативных цист. Объясняется это тем, что неразвившиеся цисты и скорлупу очень трудно отделить от живых науплий. Будучи же заглоченными, они могут стать причиной закупорки кишечника личинок. Особенно часто это встречается у молоди стерляди и других видов, чьи личинки отличаются мелкими размерами. Кроме того, на внешней поверхности скорлупы иногда встречаются споры бактерий и растений, что также может быть небезопасным.
Из цист, лишенных скорлупы, вылупляются науплии, обладающие большим запасом энергии, поскольку последняя не расходуется на работу по разрыву скорлупы и выходу из нее.
Применение декапсулированных цист непосредственно в качестве стартового корма имеет следующие преимущества: отпадает необходимость в инкубации, следовательно, не нужны инкубационные аппараты и среды, специальные помещения, системы обогрева, подачи сжатого воздуха. Исключается или резко сокращается расход электроэнергии. Не требуется отделять корм от скорлупы и неразвившихся цист. Процесс сокращается с 48 ч до 20 мин. Устраняется зависимость производства от крайне непостоянного показателя – величины «всхожести» цист: практически все цисты используются как стартовый корм. Устраняется опасность занесения с кормом болезней рыб.
Применение метода декапсуляции заключается в следующем: сухие яйца необходимо в течение часа подержать в пресной воде, а затем поместить в следующий раствор: 50 г гипохлорита кальция и 16 г кальцинированной соды на 1 л воды. Данные вещества тщательно перемешиваются в течение 1–1,5 мин и отстаиваются, затем сливается осадок. Соотношение объемов яиц и раствора должно быть 1:10.
В целом, для декапсулирования яиц подойдут препараты, содержащие активный хлор: диоксид хлора, гипохлорит натрия, гипохлорит кальция, хлорная (белильная) известь (оптимальная концентрация активного хлора в растворе 17 г/л при температуре около 20 °С). Примерная концентрация этих веществ в растворе должна быть следующей: гипохлорит кальция – 3 %, хлорная известь – 6 %, гипохлорит натрия – 9 %. Но необходимо соблюдать осторожность: декапсулирующий раствор – это едкая жидкость, которая может разъесть кожу рук, также она не должна попадать в глаза, рот, нос.
Декапсуляция длится до часа (обычно не более получаса): раствор с яйцами постоянно перемешивается вручную или посредством пузырьков от компрессора (яйца должны быть постоянно в движении).
По мере своего разрушения оболочки яиц приобретают оранжевый цвет. Декапсулированные яйца могут сразу же скармливаться малькам, необходимо лишь промыть их в течение 8–10 мин проточной теплой водой. В сачках применяются только капроновые материалы (шелк разъедается хлором), емкости должны быть стойкими к коррозии.
Декапсулированные яйца хорошо хранятся в холодильнике, в плотно закрытой банке. Рекомендуется перед скармливанием замочить их в воде на 15–20 мин или залить горячей водой на 3–5 мин. Если же необходимо «законсервировать» продукт, то его хранят в насыщенном солевом растворе в течение нескольких месяцев, а по мере необходимости инкубируют или скармливают. В таком растворе личинки рачков
обезвоживаются и у них приостанавливаются процессы жизнедеятельности. Для того чтобы вернуть их в нормальное состояние, необходимо положить эмбрионов в раствор с соленостью менее 80 ‰.
как организовать производство и о чем нужно знать
Выращивание форели в бассейнах давно практикуется в рыбных хозяйствах. Этот метод позволяет эффективно выращивать и размножать рыбу, регулярно получая потомство. По затратам бизнес требует сравнительно небольших вложений, но в дальнейшем способен быстро окупиться и принести большую прибыль.
О чем стоит позаботиться при открытии бизнеса
Собственное рыбное хозяйство, специализирующееся на выращивание форели, может стать прибыльным и эффективным бизнесом. Для разведения и выращивания рыбы не потребуется чрезмерных капиталовложений, и обустроить ферму можно на дому, имея собственный загородный участок.
Разведение форели – прибыльный бизнес, который в России находится в зачаточном состоянии из-за отсутствия специалистов, знакомых с технологией разведения и способных создать подходящую инфраструктуру для этого бизнеса.
Поэтому, начав собственное дело по разведению рыбы, вы наверняка получите прибыль и окупите вложения. Перед началом собственного дела стоит учитывать следующие факторы:
Разведение форели
- Определиться с видом выращиваемой рыбы – к условиям неволи лучше всего адаптируются радужная и ручьевая форель, которую обычно и выращивают в рыбных хозяйствах
- Для эффективного ведения бизнеса необходимы значительные площади для разведения. К примеру, 1000 рыб годовалого возраста могут сосуществовать на территории в 1 Га. При дальнейшем росте территорию жизнедеятельности необходимо расширять
- Форель растет медленно и на третьем году жизни вес средней рыбы достигает 500 г, а самки становятся способными метать икру. Начать получать прибыль можно через 3-4 года с момента открытия бизнеса, это стоит учитывать при планировании бюджета
Рыбное хозяйство требует постоянного присутствия, необходимо подобрать персонал, знакомый с поставленными задачами, уделять значительное внимание развитию и проблемам хозяйства.
Особенности существования рыб и продолжительность жизни
Начиная собственный бизнес на разведении рыбы, прежде всего, необходимо определиться с тем, какие именно сорта будут выращиваться. В рыбных форелевых хозяйствах популярны следующие сорта:
- Ручьевая форель – водится в горных и равнинных водоемах, чувствительна к качеству воды, для нормального существования нуждается в использовании проточного водоема с налаженной системой аэрации и контроля температуры
- Радужная форель – также встречается в холодных реках и ручьях, однако может существовать и в водоемах со стоячей сравнительно теплой водой. Это семейство отличается наличием разновидностей, отличающихся высокими характеристиками роста и набора массы, – до 2 раз быстрее стандартных видов
Условия для выращивания обоих видов сравнительно схожие, но, несмотря на это, специалисты рекомендуют выращивать в одной емкости по одному сорту.
Рыбный бизнес
Совместное выращивание допустимо, но при этом необходимо создавать усредненные условия, комфортные для обеих разновидностей рыб, влияющие на скорость роста.
Ручьевая форель отличается высокими темпами роста, и взрослые особи набирают значительный вес. Средняя продолжительность жизни – 8-10 лет, максимум – 12 лет. Средний вес взрослых особей 9 кг, максимальный – 12 кг.
Радужная форель значительно уступает ручьевой и при том же сроке жизни максимальный вес средней особи не превышает 10 кг, с учетом особенностей рациона. Радужная форель менее прихотлива к условиям содержания, отличается устойчивостью к случайным перепадам температуры и другим отклонениям от нормы содержания рыбы в бассейнах или искусственных водоемах.
Способы разведения рыб в домашних условиях
Существует три основных способа выращивания форели в домашних условиях:
- Садковый – для выращивания огораживается участок водоема при помощи сетчатых или решетчатых садков. Один из наиболее комфортных методов, но есть сложности с регулированием температуры воды и других параметров среды. При разрыве садков есть вероятность утери рыбы.
Домашний водоем
- Прудовой – искусственный пруд позволяет создать комфортные условия для рыб, но требует значительного обустройства инфраструктурных объектов. В частности необходимо создать систему контроля параметров воды, обеспечить искусственное течение в условиях замкнутого водоема.
- Разведение в бассейнах или УЗВ – установки замкнутого водоснабжения представляют собой наиболее простой вариант для разведения форели. УЗВ представляет собой бассейн с контролируемой подачей воды и прочими параметрами среды. Позволяет создать комфортные условия для роста рыб.
Разведение рыбы в домашних условия потребует создания комфортной среды для развития рыбы от малька до взрослой особи, независимо от выбранных вариантов разведения.
Подробней о технологии выращивания форели в домашних условиях
Выращивание в УЗВ – наиболее популярный и простой метод разведения в рыбных хозяйствах страны и всего мира, для выращивания форели и других осетровых рыб. УЗВ представляет собой следующий комплект оборудования:
- Пластиковый бассейн – сборный или литой с гладкими стенками
- Устройства циркуляции воды, создающие направленное течение внутри емкостей
- Устройства насыщения кислородом – компрессоры с регулируемой мощностью подачи воздуха
- Озонаторы для озонирования воды
- Устройства откачки и фильтрации воды для удаления отходов жизнедеятельности форели из емкостей
Бассейны или УЗВ различаются по объему воды, позволяя подобрать подходящую емкость для любого объема рыб. Кроме того, с помощью искусственных прудов замкнутого типа контролируется среда для разведения мальков, инкубации икры.
Чем кормить форель
Ручьевая и радужная форель являются хищниками и требуют соответствующего рациона, основанного на белковой пище. В условиях рыбного хозяйства большой популярностью пользуются сухие корма со сбалансированным содержанием полезных компонентов, являющихся альтернативой натуральной, белковой пище. Сухие корма подбираются опытным путем с учетом особенностей. В продаже присутствуют корма, рассчитанные на разные возрастные группы, изготовленные с учетом особенностей рациона рыбы.
Способы кормления
Также используют живые корма. Для вскармливания мальков используется зоопланктон с протертым яичным желтком и селезенкой. В пищу взрослых особей могут использоваться мясные добавки, ингредиенты, полученные при переработке внутренних органов и кишечной ткани крупнорогатого скота. Использование мясных кормов натурального происхождения придает мясу приятный красный окрас, улучшает вкусовые характеристики после приготовления в пищу. Для хранения мясных кормов необходимо использовать специальные холодильные камеры, обеспечивающие сохранение белковой пищи.
Рацион форели рассчитывается с учетом возраста и времени года, чтобы обеспечить сбалансированное отложение жиров и получение полезных микроэлементов. Для ускорения роста и улучшения физического состояния рыбы, растущей в закрытых помещениях, в пищу могут добавляться витаминные добавки, компенсирующие отсутствие полезных веществ, присутствующих в воде и открытых водоемах в условиях обычной среды.
Сложности нереста в искусственной среде
Форель не способна самостоятельно размножаться в искусственной среде и для получения потомства придется произвести принудительное оплодотворение икринок.
Икра появляется у каждой зрелой особи форели на третьем году жизни и далее. У взрослых особей радужной форели количество икринок колеблется в промежутке от 800 до 3000 штук. У ручьевой от 300 до 1300 штук. В условиях искусственной среды нерест и оплодотворение происходят следующим образом:
Размер нереста
- Из количества рыб удаляются крупные самки, способные дать большое количество икры. После удаления рассаживаются отдельно, до наступления периода полного созревания икры.
- Созревшая икра удаляется вручную. Для этого рыбу необходимо обернуть чистой тканью и руками аккуратно выдавить икру через естественное отверстие для метания икры.
- Икра выдавливается в чистую посуду без воды.
- Далее в икру добавляется сцеженная семенная жидкость самца форели.
- Икра аккуратно перемешивается птичьим пером, не повреждая структуру икринок.
- Через 5 минут в посуду с икрой добавляется вода той же температуры, что и среда из которой извлечена самка.
После оплодотворения икры она отправляется в специальные емкости инкубаторы, где поддерживается необходимая температура и другие параметры среды. Для того чтобы получить хорошее потомство, необходимо брать икру только взрослых самок и строго соблюдать сроки созревания икры, в этом случае процент вылупления будет достаточно высоким. Также для увеличения объемов вылупившихся икринок используются специализированные препараты.
Куда продавать выращенную форель
Вырастив первую партию взрослой рыбы, с весом от одного килограмма и более, необходимо определить пути сбыта продукции. Перед тем как предлагать рыбу покупателю убедитесь в том, что все документы в порядке и не будет претензий со стороны санитарной службы.
Реализовать продукцию можно как непосредственным покупателям – ресторанам, кафе, предлагающим рыбные блюда и морепродукты, так и оптовым закупщикам, поставляющим форель и другую рыбу на рынки и в заведения общественного питания. Работая с прямыми покупателями, Вы получаете высокие цены. Однако большинство заведений уже имеют поставщиков. Оптовые заказчики закупают форель дешевле, но в большом объеме, для последующей перепродажи.
При реализации необходимо оставлять достаточный запас половозрелых самок, способных нереститься, чтобы поддерживать поголовье на нужном уровне.
Стоимость килограмма определяется исходя из массы, возраста и размеров рыбы. Взрослые особи весом от 5 кг и более стоят дороже всего и пользуются высоким спросом в ресторанах, предлагающих эксклюзивную кухню. Найти покупателей на элитную продукцию несложно, главное не ошибиться в цене и подобрать лучший вариант.
Заметили ошибку? Выделите ее и нажмите Ctrl+Enter, чтобы сообщить нам.
минусы и плюсы — «VEXSI» ЖУРНАЛ — ОБО ВСЁМ!
09.04.2017Пожалуйста, оцените материал «» нажав на звездочку Фото: 748×624 px; 739.9 Kb
Выбрать метод для содержания лососевых рыб в садках или домашней УЗВ
Для выращивания форели применяют несколько методов — экстенсивный, полуэкстенсивный и интенсивный. Первый экстенсивный способ зачастую применяют при разведении малька в садках, которые устанавливаются на больших водоемах, где рыба питается естественной пищей и поэтому эта технология требует минимальных затрат на приобретение корма. Полуэкстенсивный метод содержания форели также используется для выращивания малька в садках и бассейнах размещенных на озере или на участке. Этот вид более эффективный чем первый, но требует значительных вложений: на приобретение кормов, периодической чистки пруда, формирования богатой кормовой базы с помощью удобрений и мелиорации водоемов. При садковой технологии выращивания используют часть водоема, ее ограждают — натягивают на каркас дели, из деревянных или металлических ящиков. Преимущество разведения рыбы в садках: месторасположение в естественной среде обитания; использование небольшой части водоема; постоянный водообмен, экономия средств на строительство гидротехнических сооружений или оборудования помещения. Минусы содержания лососевых в садках заключается в следующем: загрязнение водоема из-за густоты посадки, товарный вес набирает через 2 года, для интенсивного роста потребуется дополнительное кормление, нет возможности следить за общим состоянием рыбы, которую также нужно будет охранять от любителей легкой наживы. Поэтому чтобы домашнее дело приносило доход дополнительно на участке можно организовать разведение птицы или домашних животных. В последнее время эффективной и прибыльной является интенсивная технология, которая требует очень больших затрат на приобретение оборудования и специальных приборов для выращивания рыбы в УЗВ. Преимуществом УЗВ при содержании форели в домашних условиях считается: полный контроль за жизнедеятельностью рыб, благодаря автоматическому оборудованию легко следить за химическим составом воды, насытить ее дополнительно кислородом и очистить воду от мусора или осуществлять нормировку корма. Разведение малька лососевых в УЗВ является очень выгодным делом так как процесс можно ускорить, а товарный вес рыбы получить через 12 месяцев. Минус интенсивной технологии при выращивании лососевых рыб в УЗВ является ее дорогая себестоимость: подключение коммуникаций (воды, электроэнергии, отопление), пуско-наладочные работы, приобретение оборудования, специальных приборов, закупка малька, корма для рыбы, резервные средства на оплату персонала и другие непредвиденные расходы, которые окупятся через 3-4 года
Для просмотра других материалов из категории «Форель в домашнем пруду» жмем на картинки:
Посмотреть все материалы из данной категории можно перейдя по ссылке Форель в домашнем пруду
. Ещё больше полезной информации (бизнес проектов, планов, стартапов) с советами и рекомендациями как начать успешный бизнес Вы найдёте в разделе «Разведение рыбы и раков
» или сделав выборку из всех материалов сайта по следующим МЕТКАМ:
Похожие материалы по теме:
«Домашние мини-фирмы по содержанию лососевых рыб Экстенсивная технология разведения форели в садках»
(бизнес-планы / расчеты / графики и схемы)
Разведение осетра в садках на водоемеОборудование и схема для выращивания осетра в УЗВРазведение карпа в УЗВУсловия содержания карпа КоиРазведение сомов в закрытых установках на даче
В каталоге бизнес-идей можно ознакомиться с интересными предложениями, расчетами окупаемости и рентабельности, с подробным описанием методов и технологий производства товаров, выращивания растений, разведения животных, почитать материалы по следующим темам:
Как начать свое дело без вложений
Способы заработка в интернете
Создание мини фермы
Прибыльный бизнес в селе
Открыть фотографию Выбрать метод для содержания лососевых рыб в садках или домашней УЗВ
в большом размере.
Комментарии к материалу «Экстенсивная технология разведения форели в садках» находятся внизу страницы — здесь можно написать отзыв, поделиться мнением или просто высказать свои мысли по этой теме. Если у Вас есть вопросы или предложения по поводу данной бизнес идеи — оставьте пожалуйста комментарий внизу…..
Тем кто хочет поделиться интересной информацией по теме «Интенсивный метод разведения малька форели в УЗВ» и ключевым словам: выращивание форели, выбрать технологию, преимущества, разведение лососевых, минусы узв, содержание рыбы, в садках, особенности бизнеса, описание или по любым другим вопросам малого бизнеса на дому предлагаем воспользоваться ссылкой «Добавить бизнес идею» (доступна после регистрации на главной странице Каталога Успешных идей для малого бизнеса
Добавлен:
Последние изменения:
Читайте также:
Аквафермер (ООО «Русакватехника») — Технология УЗВ
Технология рыбоводства на сегодняшний день прогрессировала не меньше,чем технологии классического животноводства
Свиноводство
Раньше
Сейчас
Птицеводство
Раньше
Сейчас
Рыбоводство
Раньше
Сейчас
Как выглядит ферма УЗВ
Здание ангарного типа
Блок водоочистки
Рыбоводные бассейны
Блок подсобных помещений
Здание ангарного типа
Блок водоочистки
Рыбоводные бассейны
Блок подсобных помещений
Технология УЗВ
Барабанный микрофильтр
Рыбоводный бассейн
Установка озонирования
Основная насосная группа
Насосный приямок
Воздуховодка
Барабанный микрофильтр
Оксигенатор
Рыбоводный бассейн
Установка озонирования
Основная насосная группа
Насосный приямок
Дегазатор
Биофильтр
Преимущества УЗВ
Хозяйство в 100 раз компактнее прудов
Возможность строительства в любом месте
Рыба класса «премиум»
Выращивание и продажи круглый год
Экономия ресурсов (воды)
Рост рыбы в 2-3 раза быстрее, чем в пруду
Полная автоматизация выращивания
Минимальный персонал и обслуживание
Бизнес не требует специальных разрешений
Бизнес под контролем, нет воровства
Экологически чистая продукция
Разведение форели
На отечественных просторах можно встретить достаточное количество фермерских хозяйств, деятельность которых связана с разведением форели в домашних условиях. На этот вид рыб, со стороны потенциального потребителя, спрос есть всегда. Такое занятие не только увлекательно и интересно, но и приносит немалый доход хозяину. Искусственное разведение форели, чтобы заняться данным бизнесом, необходимо тщательно все обдумать и взвесить. При разведении форели, любой человек сталкивается с рядом затруднений. Подробнее рассмотрим некоторые из них.
Для данного вида рыб потребуется водоем, у которого глиняные стены. Разведение форели в УЗВ — этот способ потребует значительны финансовых затрат, на приобретение данной установки. Можно сделать водоем своими руками, это не составит особого труда. Трудности возникнут в правильном водоснабжении бассейна. В данном случае необходимо учитывать место, где будет расположен водоем, количество воды, которое мы можем позволить использовать. От того и будет зависеть размер бассейна, а, следовательно и количество рыбы, которую сможем в нем вырастить. Здесь расчет производится не по моллюскам, а по взрослой рыбе.
К водоснабжению относится и слив воды с водоема, ведь нам придется чистить бассейн, регулярно менять в нем воду. Вопрос о сливе воды с водоема необходимо согласовывать с администрацией района. Если финансы позволяют, то можно самостоятельно сделать сточный колодец, или поставить очистительную систему. Несмотря на относительно высокую стоимость системы очистки воды, она окупается достаточно быстро. Очищенной водой мы можем до 10 раз наполнять вновь свой водоем. Помимо вышесказанного нам необходимо решить еще один вопрос, связанный с циклом разведения рыбы. Икру мы можем покупать на других фермах, а можем самостоятельно использовать весь цикл. Несомненно, приобретать икру у других фермеров намного проще. Но в данном случае не следует забывать и о гибели икры в новом пруде. При подселении, примерно 5 процентов икры погибает, а в течение всего времени роста рыбы, ее гибнет еще до 10 процентов. Таким образом, при приобретении икры покупаем ее на 15 процентов больше рассчитанной норма.
Не забываем и о количестве еды для рыбы. Оно будет зависеть от того, до какой массы мы собираемся растить форель, от температуры воды в бассейне. Если вода в водоеме хорошо прогрета, то рыба потребляет больше пищи, и, соответственно быстрее набирает вес. Температура воды не должна быть больше 36 градусов, иначе рост форели остановится. Кормить рыбу необходимо ежедневно. Корм молодых форелей и взрослых несколько отличается. Для первых необходимо наличие в пище большего количества жиров и белка.
Теперь о самой технологии выращивания форели в домашних условиях. Нерестовый период у форели приходится на март-апрель месяца. Среди особей маточного стада отбираем лучших и помещаем в садки. На один квадратный метр можно поместить от 25 до 30 рыб. Ежедневно наблюдаем за рыбами и при созревании икры приступаем к ее отцеживанию. Для этого берем 3-5 самок, заворачиваем их в чистую ткань, можно использовать полотенце и в чистый таз выдавливаем икру. Затем в этот же таз с икрой отцеживаем у 2-3 самцов сперму, при этом, аккуратно, при помощи гусиного пера, икру помешиваем. После чего добавляем немного воды. Процесс оплодотворения происходит в течение 3-5 минут. Если мы хотим повысить степень оплодотворения икры, то используем раствор Хамора.
Более подробно рассмотрим процесс отбора икры. Этот процесс можно проводить при помощи наркотизации производителей. Для этого потребуется раствор трихлорбутилалкоголя. Длительность наркоза составляет от 2 до 10 минут. Этого времени достаточно, чтобы выполнить операцию. Далее помещаем в инкубационный аппарат уже оплодотворенную икру. Этот процесс производим согласно инструкции к аппарату. Продолжительность инкубационного периода зависит от температуры воды и может длиться 18-86 дней. Если температура воды в пределах от плюс 7.5 до плюс 8.9 градусов, то этот период составит 45-50 дней. Как правило, при нормальных условиях выклев личинок происходит в течение 5-6 дней. При выклеве их вес от 38 до 60 миллиграмм, а длина от 12.2 до 16.1 миллиметра.
На первоначальном этапе инкубации необходимо поддерживать температуру плюс 5-10 градусов. Затем ее можно повысить до плюс 12. Выклюнувшиеся личинки рыбы помещаем в специальные лотки или бассейн. Там они находятся, пока не достигнут массы в 1-2 грамма. На один квадратный метр можем поместить до 10 тысяч личинок. С учетом их гибели, плотность составит на 1 метр квадратный примерно 9 тысяч. Постоянно в воде кислорода должно содержаться не менее 70 процентов. После этого можно переходить на активный корм. Подкормку начинаем с того времени, когда на 2/3 рассосется желтый мешок, и хотя бы 10 процентов молодняка смогут самостоятельно принимать пищу. Первые 12 часов корм вносим через 30 минут. Выращивается молодняк, до веса в 1 грамм от 60 до 80 дней. По истечении этого периода времени, когда молодняк набрал массу в 1-2 грамма, они становятся пригодны для их дальнейшего выращивания в бассейнах, водоемах, прудах.
Похожие статьи:
Рыбоводство → Выбор производителей для разведения рыбы
Рыбоводство → Разведение белого амура
Рыбоводство → Искусственное разведение рыбы
Рыбоводство → Искусственное разведение рыбы
Рыбоводство → Ферма по выращиванию форели
Рыбоводство → Разведение сома
Рыбоводство → Искусственное разведение форели
Новые технологии увеличивают производство форели
По словам д-ра Дженовьева Ингле де ла Мора, исследователя Министерства сельского хозяйства, животноводства, сельского развития, рыболовства и продовольствия (SAGARPA), развитие также стало источником занятости в организациях страны, где осуществляется эта производственная деятельность.
Менеджер проекта объяснил, что фото-период — это технологический процесс, с помощью которого форель может воспроизводиться вне обычного сезона размножения, что позволяет аквакультурам иметь в наличии икры форели в течение всего года.
Увеличивая или уменьшая продолжительность светового дня, используемого для имитации лета или зимы, можно ускорить или отложить периоды нереста форели. «Это делается в комнате фото-периода, где применяется искусственное освещение», — сказал доктор Ингл де ла Мора во время посещения водного центра «Татакани» в Джилоцинго, штат Мехико.
Она сказала, что пилотная фаза проекта была успешно применена в центре аквакультуры «Эль Зарко», расположенном в штате Мехико, и распространилась на производственное предприятие «Татакани», что привело к появлению других производителей форели (Идальго, Пуэбла, США). Чиуауа и Мичоакан) обратились к INAPESCA за советом по применению метода воспроизводства.
Исследователь отметил, что еще одним преимуществом технологии фото-периода является сокращение импорта икры форели, что стимулировало производство этого вида внутри страны.
Она подчеркнула, что поправка к процессу воспроизводства также способствует укреплению позиций производителей в их общинах, поскольку они создают выгодные альтернативы занятости, способствующие их экономике. Помимо обеспечения доступности вида и удовлетворения потребности в пище в течение всего года.
В Мексике с ноября по февраль обычно нерестится радужная форель, выращиваемая на фермах, сказала она.
Между тем, исследователь INAPESCA, Магдалена Домингес Мачиан, отметила, что Институт выделит 50 миллионов долларов на укрепление инфраструктуры и продвижение аквакультуры генетического улучшения выращиваемых видов, среди которых форель, окунь, желтый и синий морской морской ушек, тилапия и тилапия. и сига, среди прочего.
Она сказала, что с учетом этих ресурсов в Программе поддержки и инвестиций в инфраструктуру в оборудование компонент «Система водных генетических ресурсов» создаст пять генетических ядер (местонахождение которых изучается), которые позволят улучшить вид.
Форель выращивается в 16 республиках, среди самых продуктивных — штат Мексика, на долю которого приходится 68 процентов, Пуэбла, 18 процентов; Мичоакн с 16 процентами, Дуранго с 3 процентами и Чиуауа и Идальго с 2 процентами.
Эта программа, отметил он, способствует воспроизводству видов, имеющих биологическое или экономическое значение для производства продуктов питания, и в то же время повышает прибыльность и конкурентоспособность сельского хозяйства, а также качество жизни аквакультурников.
Новый уровень разведения форели
Кайл Мартин, старший генетик компании Troutlodge, работает в компании более 12 лет, управляя операциями программы разведения в сотрудничестве с отделом исследований и разработок, чтобы гарантировать, что мы отбираем правильные признаки и используем лучшие методы, доступные для сбор информации. Сосредоточив внимание на качествах, которые наиболее важны для отрасли, мы приносим пользу нашим клиентам.
Увлеченный наукой и рыбной ловлей, Кайл решил объединить их, изучая генетику аквакультуры в колледже, чтобы помочь накормить мир.Начав свою карьеру в Troutlodge в 2008 году, он стал свидетелем многих достижений, таких как более широкое использование генетики и технологий геномики. «Когда я только начинал, генотипирование (анализ структуры ДНК и различий ДНК между животными) было очень дорогостоящим. Стоимость геномики сейчас значительно снизилась, что позволяет нам расширить использование технологий геномики в наших программах, например, для повышения устойчивости к болезням ».
Hendrix Genetics также стала более эффективной, используя передовую автоматизацию в наших системах обработки данных, что позволяет нам и дальше оставаться признанным лидером в области аквакультуры.Используя новейшие технологии, Hendrix Genetics работает над разработкой альтернативных методов фенотипирования, которые улучшат качество данных и благополучие животных. «Наша цель состоит в том, чтобы иметь возможность фенотипировать животных без необходимости вынимать их из воды, повышая стандарты благополучия животных».
Прекрасное будущее для Troutlodge с продолжающимся расширением геномной селекции, устойчивости к болезням и других ценных качеств. Кайл упоминает : «Troutlodge планирует расширить специализацию продуктов для удовлетворения потребностей конкретных рынков.Постоянно проводя полевые испытания в определенных регионах и в их среде, мы можем разрабатывать специализированные продукты, адаптированные для конкретных условий ». Несомненное преимущество для уникальной региональной среды, такой как Перу, где высокогорье находится на большой высоте, а уровень кислорода в воде ниже.
Как старший генетик в Troutlodge, Кайл часто путешествует по проектам для клиентов по всему миру, что дает возможность встретиться с клиентами и получить данные, которые можно снова применить в нашей программе разведения и улучшить генетические характеристики наших животных.Построение отношений и обмен знаниями с людьми по всему миру, а также повышение квалификации в отрасли.
Поскольку аквакультура является относительно новой отраслью по сравнению с другими видами животноводства, такими как, например, птицеводство или крупный рогатый скот, Troutlodge делает успехи в развитии наших технологий, догоняя другие отрасли. Развиваясь хорошими темпами, Troutlodge смогла продвинуться во многих разработках на этом пути и выводит отрасль на новый уровень разведения форели.
Start up работает с Hendrix Genetics над улучшением конверсии корма для форели
Project позволит Hendrix Genetics выбрать индивидуальную форель с улучшенной скоростью метаболизма, которая позволяет прогнозировать конверсию корма.
В пресс-релизе компания Hendrix Genetics, занимающаяся многовидовой селекцией, сообщает, что она инициировала новое исследование совместно с американским стартапом GenetiRate, который разработал технологию, которая может прогнозировать конверсию корма на основе показателей метаболизма, измеренных на личинках рыб или мышечной ткани.
Проект должен начаться в ближайшее время, а обзор результатов запланирован на конец 2020 года. В исследовании будет использоваться технология для изучения племенного поголовья форель, которое может обеспечить значительный генетический прогресс для наших клиентов и отрасли.
Возможность выбора форели со значительно улучшенной конверсией корма означала бы повышение прибыльности для фермеров. Производители получают выгоду от увеличения скорости роста при сохранении потребления корма.
GenetiRate был основан докторомБенджамин Ренквист из Университета Аризоны и недавно получил премию за инновации в морепродуктах на Североатлантическом форуме по морепродуктам. GenetiRate провела успешные испытания, используя свою технологию с другими водными видами. В случае успеха проект позволит Hendrix Genetics выбрать отдельную форель с улучшенной скоростью метаболизма, что позволяет прогнозировать конверсию корма.
«Мы рады начать эти испытания, чтобы понять, как можно применить наш процесс отбора для улучшения роста и эффективности кормления радужной форели.Мы ценим то, что Hendrix Genetics осознает ценность применения нашей технологии для лучшего удовлетворения потребностей своих клиентов. Повышая эффективность кормов, GenetiRate и Hendrix Genetics Aquaculture стремятся помочь отрасли аквакультуры удовлетворить потребности потребителей в экологичности в ресторанах или продуктовых магазинах », — говорит основатель и президент GenetiRate Бенджамин Ренквист.
Директор отдела исследований и разработок Hendrix Genetics Aquaculture Робберт Блонк заявил: «Как известно, конверсию корма сложно измерить на индивидуальном уровне для аквакультурных видов.Однако эта новая технология позволяет нам измерять индивидуальную конверсию корма и таким образом повышать эффективность племенного стада форель. В конечном итоге это приводит к улучшенному конечному продукту с повышенной прибыльностью и устойчивостью для всей отрасли ».
Партнерство для увеличения производства форели и яиц лосося
Новое партнерство между компанией Landcatch Natural Selection в Клакманнаншире, Великобритания и Сиэтл, штат Вашингтон, США, Troutlodge создаст гигантскую компанию по выращиванию яиц лосося и форели.Landcatch недавно стал владельцем 45 процентов акций Troutlodge и повысит качество своей рыбной икры с помощью генетических технологий материнской компании Hendrix Genetics.
«Для нас это означает, что мы можем намного быстрее улучшить наши запасы и производительность наших продуктов для наших клиентов», — сказал SeafoodSource Джон Дентлер, член исполнительной команды Troutlodge. Многолетний опыт Hendrix Genetics в области генетических технологий в производстве бройлеров и несушек, индейки и свиней может быть использован для того, чтобы помочь Landcatch улучшить свои программы разведения форели и лосося.
«Мы будем использовать технологии для быстрого увеличения наших запасов. Мы отправляем яйца в 50 стран, от 450 до 500 миллионов яиц в год. Это действительно поможет нам адаптировать программы к различным регионам и климатам, например, от островов Перу до северной Европы », — сказал Джим Парсонс, исполнительный вице-президент по производству Troutlodge.
Генетические технологии, предложенные Хендриксом и Ландкэтчем, также помогут Troutlodge производить лосося и форель, которые более устойчивы к болезням, добавил Парсонс.«Компания Landcatch только что разработала маркер для защиты от морских вшей, который окажет большое влияние на отрасль. И Landcatch смог разработать генетический маркер инфекционного некроза поджелудочной железы (IPN), что очень помогло отрасли », — сказал он.
Компания Troutlodge, которая уже является крупнейшим в мире производителем икры лососевых и радужной форели, недавно расширила свои производственные мощности. Помимо шести инкубаториев в штате Вашингтон и одного в Орегоне, компания недавно построила еще один инкубаторий в южном Айдахо.
Кроме того, недавно созданная компания Landcatch и Troutlodge в Чили, Landcatch-Troutlodge Chile SA, позволит Troutlodge значительно расширить свой рынок яиц лосося в Чили в следующие три-пять лет.
«Наша цель — стать там крупным игроком. Мы производим от 10 до 15 миллионов яиц лосося в год, и мы хотели бы вырасти до 50 миллионов, в зависимости от того, что делает рынок », — сказал Дентлер.
В то время как предприятие Troutlodge в Чили продолжит производство икры стальной форели, особое внимание будет уделяться икрам атлантического лосося и кижуча.«Также планируется разработать программу племенного кижуча для обслуживания чилийской промышленности. Ожидается, что при объединении всех этих программ количество рабочих мест значительно вырастет », — говорится в заявлении Troutlodge.
Программа расширения в Чили добавит еще 4 000 кубометров к существующим 5 500 кубометрам производственных мощностей по выращиванию маточного стада, что на 80 процентов больше.
Разработка и применение биологических технологий в генетическом разведении рыб
Каузе А., Ритола О., Паананен Т., Валроос Х., Мантисаан Э.А.Генетические тенденции роста, половой зрелости и деформаций скелета, а также скорость инбридинга в программе разведения радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура, 2005, 247: 177–187
Google Scholar
Neira R, Díaz NF, Gall GAE, Gallardo JA, Lhorente JP, Alert A. Генетическое улучшение кижуча ( Oncorhynchus kisutch ). II: Выборочный ответ на раннюю дату нереста. Аквакультура, 2006, 257: 1–8
Google Scholar
Saillant E, Dupont-Nivet M, Haffray P, Beatrice C.Оценка наследственности и взаимодействия генотипа с окружающей средой по массе тела морского окуня ( Dicentrarchus labrax L.), выращенного в условиях коллективного выращивания. Аквакультура, 2006, 254: 139–147
Google Scholar
Геяс А.А., Вуллиамс Дж. А., Таггарт Дж. Б., Саттар М. А., Дас Т. К., МакЭндрю Б. Дж., Пенман Д. Д.. Оценка наследственности толстолобика ( Hypophthalmichthys molitrix ) по урожайным признакам с использованием микросателлитного определения отцовства.Аквакультура, 2009 г., 294: 187–193
CAS Google Scholar
Резк М.А., Смитерман Р.О., Уильямс Дж.С., Николс А., Кучуктас Х., Данхэм РА. Ответ на три поколения селекции на увеличение массы тела у канального сома Ictalurus punctatus , выращенного в земляных прудах. Аквакультура, 2003 г., 228: 69–79
Google Scholar
Embody GC, Хейфорд, CO.Преимущество выращивания мальков ручейной форели от избранных заводчиков. Trans Am Fish Soc, 1925, 55: 135–142
Google Scholar
Майн К.Л., Рейнольдс Э. Селективное разведение рыб в Азии и США. В: Материалы семинара в Гонолулу, Гавайи. 1993, 3-7: 206–213
Google Scholar
Ван ХФ, Лю Х, Су ДжХ, Ван ГФ, Вэй Ю.М. Влияние голодания и последующего повторного кормления на рост и биохимический состав золотой форели Ганьсу.J Anim Vet Adv, 2013, 12: 289–294
CAS Google Scholar
Тан С.Дж., Ли С.Ф., Цай В.К., Чжао Ю. Микросателлитный анализ изменчивости среди диких, одомашненных и генетически улучшенных популяций тупорылого леща ( Megalobrama amblycephala ). Zool Res, 2014, 35: 108–117
CAS PubMed Google Scholar
Li SF, Tang SJ, Cai WQ.Маркеры RAPD-SCAR для генетически улучшенного NEW GIFT Nile Tilapia ( Oreochromis niloticus niloticus L.) и их применение для идентификации штаммов. Zool Res, 2010, 31: 147–53
PubMed Google Scholar
Лю Ю.Г., Чен С.Л., Ли Б.Ф., Ван З.Дж., Лю ЗДЖ. Анализ генетической изменчивости в отобранных стадах заводской камбалы, Paralichthys olivaceus , с использованием маркеров AFLP. Biochem Syst Ecol, 2005, 33: 993–1005
CAS Google Scholar
Нин И, Лю XD, Ван Зи, Го В, Ли YY, Се ФДж.Генетическая карта большого желтого горбыля Pseudosciaena crocea . Аквакультура, 2007, 264: 16–26
CAS Google Scholar
Чжан Т.С., Конг Дж., Лю Б.С., Ван Кью, Цао Б.Х., Луан С., Ван В.Дж. Оценка генетических параметров роста молоди и верхней термостойкости камбалы ( Scophthalmus maximus Linnaeus). Acta Oceanol Sin, 2014, 33: 106–110
CAS Google Scholar
Hong WS, Zhang QY.Обзор разводимых в неволе видов и производства мальков морской рыбы в Китае. Аквакультура, 2003 г., 227: 305–318
Google Scholar
Ян WJ, Кан XL, Ян QF, Линь Y, Фанг MY. Обзор разработки методов генотипирования для оценки разнообразия сельскохозяйственных животных. Журнал зоотехники и биотехнологии, 2013 г., 4: 2
PubMed Central PubMed Google Scholar
Ариф И.А., Хан Х.А.Молекулярные маркеры для анализа биоразнообразия диких животных: краткий обзор. Anim Bioiv Conserv, 2009, 32: 9–17
Google Scholar
Джандер Г. Идентификация и клонирование генов с помощью картирования молекулярных маркеров. Методы Мол Биол, 2006, 323: 115–126
CAS PubMed Google Scholar
Луо З.В., Хакетт К.А., Брэдшоу Дж. Э., Макникол Дж. В., Милбурн Д. Построение карты генетического сцепления у тетраплоидных видов с использованием молекулярных маркеров.Генетика, 2001, 157: 1369–1385
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Montaldo HH, Meza-Herrera CA. Использование молекулярных маркеров и основных генов в генетическом улучшении домашнего скота. Электронный журнал биотехнологий, 1998, 1: 1–7
Google Scholar
Агарвал М., Шривастава Н., Пад Х. Достижения в методах молекулярных маркеров и их применении в науках о растениях.Rep Plant Cell, 2008, 27: 617–631
CAS PubMed Google Scholar
Postlethwait JH, Johnson SL, Midson CN, Talbot WS, Gates M, Ballinger EW, Africa D, Andrews R, Carl T., Eisen JS. Карта генетического сцепления рыбок данио. Наука, 1994, 264: 699–703
CAS PubMed Google Scholar
Нарус К., Танака М., Мита К., Шима А., Постлетвейт Дж., Митани Х.Генная карта medaka: след протохромосомы предковых позвоночных, выявленный сравнительным картированием генов. Genome Res, 2004, 14: 820–828
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Kai W, Kikuchi K, Fujita M, Suetake H, Fujiwara A, Yoshiura Y, Ototake M, Venkatesh B, Miyaki K, Suzuki Y. Карта генетических связей для тигрового иглобрюха, Takifugu rubripes . Генетика, 2005, 171: 227–238
CAS. PubMed Central PubMed Google Scholar
Уолтер Р. Б., Рейнс Дж. Д., Рассел Дж. Э., Герра Т. М., Дэниэлс К., Джонстон Д. А., Кумар Дж., Уилер А., Келнар К., Канолкар В. А., Уильямс Е. Л., Хорнекер Дж. Л., Холлек Л., Мамеров М. М., Педроза А., Казианис С.Карта генетического сцепления микросателлитов для Xiphophorus . Генетика, 2004, 168: 363–372
Google Scholar
Peichel CL, Nereng KS, Ohgi KA, Cole BLE, Colosimo PF, Buerkle CA, Schluter D, Kingsley DM. Генетическая архитектура дивергенции трех видов колючек. Природа, 2001, 414: 90л – 905
Google Scholar
Янг В.П., Уиллер, Пенсильвания, Кориелл В.Х.Подробная карта связи радужной форели, полученной с использованием удвоенных гаплоидов. Генетика, 1998, 148: 839–850
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Ли Б., Ли В. Дж., Стрелман Дж. Т., Карлтон К. Л., Хоу А. Е., Хулата Дж., Слеттан А., Стерн Дж. Е., Тераи Ю., Кочер Т. Д.. Карта генетического сцепления второго поколения тилапии ( Oreochromis spp .). Генетика, 2005, 170: 237–244
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Лю З.Дж., Кордес Дж.Ф.Технологии ДНК-маркеров и их применение в генетике аквакультуры. Аквакультура, 2004, 238: 1–37
CAS Google Scholar
Чаухан Т., Раджив К. Молекулярные маркеры и их применение в рыболовстве и аквакультуре. Adv Biosci Biotech, 2010, 1: 281–291
CAS Google Scholar
Laghari MY, Lashari P, Zhang X, Xu P, Narejo NT, Xin B, Zhang Y, Sun X.QTL-картирование экономически важных признаков карпа ( Cyprinus carpio L.). J Appl Genet, 2014 г., DOI: 10.1007 / s13353-014-0232-y
Google Scholar
Gui JF, Zhu ZY. Молекулярные основы и генетическое улучшение экономически важных признаков у животных аквакультуры. Chin Sci Bull, 2012, 57: 1751–1760
CAS Google Scholar
Цзян Ш., Лю Х., Су Дж. Г., Донг Ф., Сюн Ф., Ляо Л.Дж., Ван Ю.П., Чжу З.Й.Построение и характеристика двух бактериальных библиотек искусственных хромосом белого амура. Mar Biotechnol, 2010, 12: 261–266
CAS PubMed Google Scholar
Geng FS, Zhou L, Gui JF. Конструирование и характеристика библиотеки ВАС для Carassius auratus gibelio , гиногенетической полиплоидной рыбы. Anim Genet, 2005, 36: 535–536
CAS PubMed Google Scholar
Чжан Дж.Дж., Шао С.В., Чжан Л.Й., Лю К., Гао Ф.Т., Донг З.Д., Сюй П, Чен С.Л.Основанная на ВАС физическая карта генома полугладкого языка ( Cynoglossus semilaevis ) первого поколения. BMC Genomics, 2014, 15: 215
PubMed Central PubMed Google Scholar
Чжао SY. Геномика и биологические науки. Chin Sci Bull, 1999, 11: 1–5
CAS Google Scholar
Sarropoulou E, Nousdili D, Magoulas A, Kotoulas G.Связывание геномов немодельных костистых животных с помощью сравнительной геномики. Mar Biotechnol, 2008, 10: 227–233
CAS PubMed Google Scholar
Star B, Nederbragt AJ, Jentoft S, Grimholt U, Malmstrom M, Gregers TF, Rounge TB, Paulsen J, Solbakken MH, Sharma A, Wetten OF, Lanzen A, Winer R, Knight J, Vogel JH, Акен Б., Андерсен К., Лагесен К., Тооминг-Клундеруд А., Эдвардсен Б.О., Мум Т., Скейдж М., Берг П.Р., Гькен Т., Куль Х., Торсен Дж., Мальде К., Рейнхардт Р., Дю Л., Йохансен С.Д., Сирл С., Лиен С., Ф. Нильсен, Йонассен И., Омхольт С.В., Стенсет Н.С., Якобсен К.С.Последовательность генома атлантической трески свидетельствует об уникальной иммунной системе. Природа, 2011, 477: 207–210
CAS. PubMed Central PubMed Google Scholar
Chen SL, Zhang GJ, Shao CW, Huang QF, Liu G, Zhang P, Song WT, An N, Chalopin D, Volff JN, Hong YH, Li QY, Sha ZX, Zhou HL, Xie MS, Yu QL, Liu Y, Xiang H, Wang N, Wu K, Yang CG, Zhou Q, Liao XL, Yang LF, Hu QM, Zhang JL, Meng L, Jin LJ, Tian YS, Lian JM, Yang JF, Miao GD , Лю С.С., Лян З., Янь Ф., Ли Й.З., Сун Б., Чжан Х., Чжан Дж., Чжу Й., Ду М, Чжао Ю.В., Шартл М., Тан К.С., Ван Дж.Полногеномная последовательность камбалы дает представление об эволюции половой хромосомы ZW и адаптации к бентическому образу жизни. Нат Жене, 2014, 46: 253–260
CAS PubMed Google Scholar
Zhang GF, Fang XD, Guo XM, Li L, Luo RB, Xu F, Yang PC, Zhang LL, Wang XT, Qi HG, Xiong ZQ, Que HY, Xie YL, Holland PWH, Paps J, Zhu YB, Wu FC, Chen YX, Wang JF, Peng CF, Meng J, Yang L, Liu J, Wen B, Zhang N, Huang ZY, Zhu QH, Feng Y, Mount A, Hedgecock D, Xu Z, Liu YJ , Domazet-Loso T, Du YS, Sun XQ, Zhang SD, Liu BH, Cheng PZ, Jiang XT, Li J, Fan DD, Wang W, Fu WJ, Wang T, Wang B, Zhang JB, Peng ZY, Li YX , Li N, Wang JP, Chen MS, He Y, Tan FJ, Song XR, Zheng QM, Huang RL, Yang HL, Du XD, Chen L, Yang M, Gaffney PM, Wang S, Luo LH, She ZC, Ming Y, Хуанг В., Чжан С., Хуан Б., Чжан Ю., Цюй Т., Ни ПХ, Мяо Г.Й., Ван Дж.Й., Ван Ц., Штейнберг С.Е., Ван Х.Й., Ли Н, Цянь Л.М., Чжан Г.Дж., Ли Ю.Р., Ян Х.М., Лю X, Ван Дж, Инь И, Ван Дж.Геном устриц выявляет стрессовую адаптацию и сложность формирования раковины. Природа, 2012, 490: 49–54
CAS. PubMed Google Scholar
Сюй П, Чжан XF, Ван XM, Ли JT, Лю GM, Куанг YY, Сюй Дж, Чжэн XH, Рен ЛФ, Ван ГЛ, Чжан И, Хо ЛХ, Чжао ZX, Цао DC, Лю Си, Ли К, Чжоу Й, Лю З. Дж., Фан Чж, Шань ГЛ, Ли XG, Ву СХ, Сонг LP, Хоу ГЙ, Цзян ЮЛ, Джени З, Ю Д, Ван Л., Шао Си Джей, Сон Л, Сун Дж, Джи П.Ф. , Wang J, Li Q, Xu LM, Sun FY, Feng JX, Wang CH, Wang SL, Wang BS, Li Y, Zhu YP, Xue W, Zhao L, Wang JT, Gu Y, Lv WH, Wu KJ, Xiao JF, Wu JY, Zhang Z, Yu J, Sun XW.Последовательность генома и генетическое разнообразие карпа Cyprinus carpio . Нат Жене, 2014 г., DOI: 10.1038 / ng.3098
Google Scholar
Девлин Р., Нагахама Ю. Определение пола и дифференциация пола у рыб: обзор генетических, физиологических и экологических влияний. Аквакультура, 2002, 208: 191–364
CAS Google Scholar
Пандиан Т.Дж., Шила С.Г.Гормональная индукция смены пола у рыб. Аквакультура, 1995, 138: 1–22
CAS Google Scholar
Пиферер Ф. Стратегии эндокринного контроля пола для феминизации костистых рыб. Аквакультура, 2001, 197: 229–281
CAS Google Scholar
Ямамото Т. Потомство искусственно индуцированной смены пола мужского генотипа (XY) в медаке ( Oryzias latipes ) с особым упором на самец YY.Джентис, 1955, 40: 406–429
CAS Google Scholar
Герреро РД. Использование андрогенов для производства всех мужских особей Tilapia aurea (steindacher). Trans Amer Fish Soc, 1975, 104: 342–348
CAS. Google Scholar
Лю SJ, Yao ZZ, Wang YQ. Индукция половыми гормонами смены пола у костистых clarias lazera и доказательства женской гомогметии и мужской гетерогаметности.J Exp Zool, 1996, 276: 432–438
CAS Google Scholar
Лю SJ, Yao ZZ. Самооплодотворение гермафродитов костистости Clarias lazera после перорального приема 17-α-метилтестостерона и их потомству. J Exp Zool, 1995, 273: 527–532
CAS Google Scholar
Чен РД, Хуан Вайоминг, Ву QJ, Йе Й. Выращивание и разведение карпа-самок (на китайском языке).Резервная рыба, 1990, 3: 21–23
Google Scholar
Луо К.К., Сяо Дж., Лю SJ, Ван Дж., Хе В.Г., Ху Дж., Цинь QB, Чжан С., Тао М., Лю Ю. Массовое производство полностью женских диплоидов и триплоидов у карася. Int J Biol Sci, 2011, 7: 487–495
PubMed Central PubMed Google Scholar
Liu HQ, Cui SQ, Hou CC, Xu J, Chen HX. Суперсамец YY, полученный гиногенетически от самки XY в Pelteobagrus fulvidraco (Richardson) (на китайском языке).Acta Hydrobiol Sin, 2007, 31: 718–725
Google Scholar
Ван Д., Мао Х. Л., Чен Х. Х., штаб-квартира Лю, Гуй Дж. Ф. Выделение Y- и X-связанных маркеров SCAR у желтого сома и применение в производстве популяций, состоящих только из самцов. Anim Genet, 2009, 40: 978–981
CAS PubMed Google Scholar
Дэн С., Мэй Дж., Ван Д., Гуй Дж. Ф. Генетическая дифференциация и разработка эффективных полоспецифичных маркеров пары Y- и X-сцепленных маркеров у желтого сома.Int J Biol Sci, 2013, 9: 1043–1049
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Hulata G. Обзор генетического улучшения карпа ( Cyprinus carpio L.) и других гибридов путем скрещивания, гибридизации и отбора. Аквакультура, 1995, 129: 143–155
Google Scholar
Кирпичников В.С., Ильясов Ю.И., Шарт Л.А., Вихман А.А., Ганченко М.В., Осташевский А.Л., Симонов В.М., Тихонов Г.Ф., Тюрин В.В.Селекция краснодарского карпа ( Cyprinus carpio L.) на устойчивость к водянке: основные результаты и перспективы. Аквакультура, 1993, 111: 7–20
Google Scholar
Zhou J, Wu Q, Wang Z, Ye Y. Анализ генетической изменчивости внутри и среди шести разновидностей карпа ( Cyprinus carpio L.) в Китае с использованием микросателлитных маркеров. Рус Дж Генет, 2004, 40: 1144–1148
CAS Google Scholar
Li SF, He XJ, Han FJ.Селективная оценка третьего-пятого поколения штамма GIFT Nile tilapia. Пекин: World Aquaculture, 2002. 410
Google Scholar
Лю SJ. Дистанционная гибридизация приводит к разной плоидности рыб. Sci China Life Sci, 2010, 53: 416–425
PubMed Google Scholar
Schwartz FJ. Мировая литература по гибридам рыб с анализом по семействам, видам и гибридам: приложение.Технический отчет NOAA NMFS SSRF, 1981, 2: 750
Google Scholar
Zhang ZH, Chen J, Li L, Tao M, Zhang C, Qin QB, Xiao J, Liu Y, Liu SJ. Достижения исследований в области отдаленной гибридизации животных. Science China Life Sci, 2014, 44: 161–174
Google Scholar
Beck ML, Biggers CJ, Dupree HK. Кариологический анализ Hypophthalmichthys molitrix , Aristichthys nobilis и их гибрида F1.Trans Am Fish Soc, 1980, 109: 433–438
Google Scholar
Сулейман АХ. Токсичность малатиона для красной тилапии (гибрид Tilapia mossambica × Tilapia nilotica ): поведенческие, гистопатологические исследования антихолинэстеразы. Mal Appl Biol (Малайзия), 1989, 18: 163–170
Google Scholar
Harms CA, Kennedy-Stoskopf S, Horne WA, Fuller FJ, Tompkins WA.Клонирование и секвенирование гибридного полосатого окуня ( Morone saxatilis × M. chrysops ), трансформирующего бета-фактор роста (TGF-бета), и разработка анализа количественной конкурентной полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (RT-qcPCR) для измерения TGF- бета-мРНК костистых рыб. Fish Shellfish Immunol, 2000, 10: 61–85
CAS. PubMed Google Scholar
Sui J, Liu QH, Xiao ZZ, Ma DY, Xu SH, He T, Liu YF, Xiao YS, Li J.Жизнеспособность, меланофор и эмбриогенез гибридов первого и второго поколений между Paralichthys olivaceus и P. dentatus . Мар Биол Рес, 2013, 9: 220–226
Google Scholar
Liu SJ, Liu Y, Zhou GJ, Zhang XJ, Luo C, Feng H, He XX, Zhu GH, Yang H. Формирование тетраплоидных запасов гибридов красного карася × обыкновенного карпа в результате межвидового гибридизация. Аквакультура, 2001, 192: 171–186
Google Scholar
Ху Дж., Лю SJ, Сяо Дж., Чжоу Й., Ю КП, Хэ ВГ, Чжао Р.Характеристики диплоидных и триплоидных гибридов, полученных от самки. Megalobrama amblycephala Yih × мужской Xenocypris davidi Bleeker. Аквакультура, 2012 г., (364–365): 157–164
Google Scholar
He WG, Xie LH, Li TL, Liu SJ, Xiao J, Hu J, Wang J, Qin QB, Liu Y. Образование диплоидных и триплоидных гибридов самки белого амура × самца леща с тупым рылом и их Анализ 5S рДНК. BMC Genetics, 2013, 14: 110
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Лю SJ, Qin QB, Xiao J, Lu W, Shen J, Li W, Liu J, Duan W., Zhang C, Tao M, Zhao R, Yan J, Liu Y.Формирование полиплоидных гибридов от скрещивания рыб разных подсемейств и его эволюционное значение. Генетика, 2007, 176: 1023–1034
CAS. PubMed Central PubMed Google Scholar
He WG, Qin QB, Liu SJ, Li TL, Wang J, Xiao J, Xie LH, Zhang C, Liu Y. Организация и анализ вариаций 5S рДНК у гибридов красного карася на разных уровнях плоидности × топорк культер. PLoS One, 2012, 6: e38976
Google Scholar
Qin QB, Wang YD, Wang J, Dai J, Xiao J, Hu FZ, Luo KK, Tao M, Zhang C, Liu Y, Liu SJ.Автотетраплоидная рыба, полученная в результате гибридизации Carassius auratus red var. (самка) × Megalobrama amblycephala (самец). Биол Репрод, 2014, 91: 93, 1–11
PubMed Google Scholar
Tung TC, Wu SQ, Ye YF, Yan SY, Du M, Lu DY. Ядерная трансплантация рыб. Sci Sin B, 1963, 7: 60–61
Google Scholar
Chen HX, Yi YL, Chen MR, Yang XQ.Исследования возможностей развития ядер культивируемых клеток рыб (на китайском языке). Acta Hydrobiol Sin, 1986, 10: 1–7
Google Scholar
Lee KY, Huang HG, Ju BS, Yang Z, Lin S. Клонированные рыбки данио путем переноса ядра из долго культивируемых клеток. Nature, 2002, 20: 795–799
CAS. Google Scholar
Ян С.Ю. Исторический обзор и некоторые комментарии по трансплантации ядер рыбам (на китайском языке).Чин Дж. Биотехнология, 2000, 16: 541–547
CAS Google Scholar
Ю. Л. Н., Цзо В. Г., Фанг Ю. Л., Чжэн В. Д.. Клеточная инженерия белого амура, полученного путем сочетания электрического синтеза и ядерной трансплантации (на китайском языке). J. Fish China, 1996, 20: 312–318
Google Scholar
Ян С.Ю. Нуклео-цитоплазматическое взаимодействие, выявленное при трансплантации ядер рыбам.В кн .: Система организации гитоплазмы. Нью-Йорк: McGraw-Hill Pub. Co., 1989. 61–81
Google Scholar
Yu LN, Yang YQ, Liu L, Zheng WD, Fang YL. Исследование трансплантата ядра рыбьей клетки с яйцом, не использующим ядро в качестве рецептора (на китайском языке). Freshw Fish, 1989, 3: 3–7
Google Scholar
Lin LT, Xia SL, Zhu XP. Исследования по ядерной трансплантации соматических клеток костистости.Zool Res, 1996, 17: 337–340
Google Scholar
Liu HQ, Yi YL, Chen HX. Рождение андрогенетического гомозиготного диплоидного вьюна (на китайском языке). Acta Hydrobiol Sin, 1987, 11: 241–246
CAS Google Scholar
Таджима А., Наито М., Ясуда Ю., Кувана Т. Производство химеры зародышевой линии путем переноса примордиальных зародышевых клеток домашней курицы ( Gallus domesticus ).Териогенология, 1993, 40: 509–519
CAS. PubMed Google Scholar
Ли Ю.М., Юнг Дж., Ким Дж. Н., Пак Т.С., Ким Т.М., Шин С.С., Кан Д.К., Лим Дж. М., Хан Дж. Опосредованное семенником образование химеры зародышевой линии основано на переносе куриных яичек непосредственно в гетерологичные семенники. Биол Репрод, 2006, 75: 380–386
CAS PubMed Google Scholar
Hill JR, Dobrinski I.Трансплантация мужских половых клеток домашнего скота. Репрод Фертил Дев, 2006, 18: 13–18
CAS PubMed Google Scholar
Добринский И. Трансплантация зародышевых клеток и ксенотрансплантация тканей семенников у домашних животных. Anim Reprod Sci, 2005, 89: 137–145
PubMed Google Scholar
Такеучи Ю., Йошизаки Г., Такеучи Т. Получение живых мальков из внутрибрюшинно трансплантированных первичных зародышевых клеток радужной форели.Биол Репрод, 2003 г., 69: 1142–1149
CAS PubMed Google Scholar
Hong YH, Liu T, Zhao H, Xu H, Wang W, Liu R, Chen T, Deng J, Gui J. Создание нормальной линии сперматогониальных клеток medakafish, способной производить сперму in vitro. Proc Natl Acad Sci USA, 2004, 101: 8011–8016
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Okutsu T, Suzuki K, Takeuchi Y, Takeuchi T, Yoshizaki G.Половые клетки яичка могут колонизировать недифференцированные половым путем эмбриональные гонады и производить функциональные яйца у рыб. Proc Natl Acad Sci USA, 2006, 103: 2725–2729
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Yi MS, Hong N, Hong YH. Генерация гаплоидных эмбриональных стволовых клеток рыб медака. Наука, 2009, 326: 430–433
CAS PubMed Google Scholar
Yi MS, Hong N, Li ZD, Yan Y, Wang D, Zhao H, Hong YH.Стволовые клетки рыб Medaka и их применение. Sci China Life Sci, 2010, 53: 426–434
PubMed Google Scholar
Nobrega RH, Greebe CD, Kant HX, Bogerd J, Franca LR, Schulz RW. Ниша сперматогониальных стволовых клеток и трансплантация сперматогониальных стволовых клеток у рыбок данио. PLoS One, 2010, 5: e12808
PubMed Central PubMed Google Scholar
Takeuchi Y, Yoshizaki G, Takeuchi T.Суррогатное маточное стадо производит лососевых. Nature, 2004, 430: 629–630
CAS. PubMed Google Scholar
Majhi SK, Hattori RS, Yokota M, Watanabe S, Strussmann CA. Трансплантация зародышевых клеток с использованием сексуально компетентных рыб: подход к быстрому размножению находящихся под угрозой исчезновения ценных зародышевых линий. PLoS One, 2009, 4: e6132
PubMed Central PubMed Google Scholar
Окуцу Т., Шикина С., Канно М., Такеучи Ю., Йошизаки Г.Производство потомства форели от родителей триплоидных лососевых. Наука, 2007, 317: 1517
CAS PubMed Google Scholar
Комен Х, Торгаард Г. Х. Андрогенез, гиногенез и производство клонов у рыб: обзор. Аквакультура, 2007, 269: 150–173
Google Scholar
Лю Дж., Ян Г. Изменения содержания меди в аллогенетических серебряных карасях после внесения сульфата меди в пруды.Isr J Aquacult-Bamid, 2009, 61: 351–355
Google Scholar
Лю SJ, Qin QB, Wang YQ, Zhang H, Zhao R, Zhang C, Wang J, Li W, Chen L, Xiao J, Luo K, Tao M, Duan W, Liu Y. Доказательства формирование самца гиногенетической рыбы. Mar Biotechnol, 2010, 12: 160–172
CAS PubMed Google Scholar
Фелип А., Зануй С., Каррилло М., Пиферрер Ф. Индукция триплоидии и гиногенеза костистых рыб с акцентом на морские виды.Genetica, 2001, 111: 175–195
CAS PubMed Google Scholar
Комен Дж., Вигертйес Г.Ф., Ван Гиннекен В.Ю.Т., Эдинг Э.Х., Рихтер С.Дж. Гиногенез карпа обыкновенного ( Cyprinus carpio L.) III. Влияние инбридинга на гонадное развитие гетерозиготного и гомозиготного гиногенетического потомства. Аквакультура, 1992, 104: 51–66
Google Scholar
Фопп-Баят Д., Колман Р., Возницки П.Индукция мейотического гиногенеза у стерляди ( Acipenser ruthenus ) с использованием УФ-облученной спермы бестера. Аквакультура, 2007, 264: 54–58
Google Scholar
Morgan AJ, Murashige R, Woolridge CA, Luckenbach JA, Watanabe WO, Borski RJ, Godwin J, Daniels HV. Эффективная доза УФ-излучения и шок давления для индукции мейотического гиногенеза у южной камбалы Paralichthys lethostigma с использованием спермы черного морского окуня ( Centropristis striata ).Аквакультура, 2006 г., 259: 290–299
Google Scholar
Piferrer F, Cal RM, Gsmez C, Alvarez-Blazquez B, Castro J, Martinez P. Индукция гиногенеза в тюрбо ( Scophthalmus maximus ): влияние УФ-излучения на подвижность сперматозоидов, эффект Гертвига и жизнеспособность в течение первых 6 мес. Аквакультура, 2004 г., 238: 403–419
Google Scholar
Rougeot C, Ngingo JV, Gillet L, Vanderplasschen A, Melard C.Индукция гиногенеза и определение пола у евразийского окуня, Perca fluviatilis . Аквакультура, 2005, 43: 411–415
Google Scholar
Lin F, Dabrowski K. Индукция гиногенеза в мускулистом дыхании ( Esox masquinongy ). Аквакультура, 1995, 137: 153–154
Google Scholar
Li Q, Kijima A. Микросателлитный анализ гиногенетических семейств тихоокеанских устриц, Crassostrea gigas .J Exp Mar Biol Ecol, 2006, 331: 1–8
CAS Google Scholar
Sun YD, Tao M, Liu SJ, Zhang C, Duan W, Shen JM, Wang J, Zeng C, Long Y, Liu Y. Индукция гиногенеза у красного карася с использованием сперматозоидов тупорылого леща. Prog Nat Sci, 2007, 17: 163–167
Google Scholar
Sun YD, Zhang C, Liu SJ, Tao M, Zeng C, Liu Y. Индукция гиногенеза у японского карася ( Carassius cuvieri ).Acta Genetica Sinica, 2006, 33: 405–412
PubMed Google Scholar
Zhang H, Liu SJ, Zhang C, Tao M, Peng L, You CP, Xiao J, Zhou Y, Zhou G, Luo KK, Liu Y. Вызванный гиногенез у белого амура ( Ctenopharyngodon idellus ) с использованием облученная сперма аллотетраплоидных гибридов. Mar Biotechnol, 2010, 13: 1017–1026
Google Scholar
Лю С.Дж., Дуань В., Тао М, Чжан Ц., Сунь Ю.Д., Шен Дж., Ван Дж., Ло К.К., Лю Ю.Создание диплоидной гиногенетической гибридной клональной линии красный карась × карп. Sci China Ser C-Life Sci, 2007, 50: 186–193
Google Scholar
Xiao J, Zou TM, Chen YB, Chen L, Liu SJ, Tao M, Zhang C, Zhao RR, Zhou Y, Long Y, You CP, Yan JP, Liu Y. Сосуществование диплоидов, триплоидов и тетраплоидный карась ( Carassius auratus ) в природных водах. BMC Genetics, 2011, 12:20
CAS PubMed Central PubMed Google Scholar
Стэнли Дж.Производство гибридных, андрогенетических и гиногенетических амазонов и амазонов. T Am Fish Soc, 1976, 105: 10–16
Google Scholar
Араи К., Онозато Х., Ямазаки Ф. Искусственный андрогенез, индуцированный гамма-облучением у лосося масу ( oncorhynchus masou ). Bull Fac Fish Hokkaido Univ, 1979, 30: 181–186
Google Scholar
Араки К., Синма Х, Нагоя Х, Накаяма I, Онозато Х.Андрогенные диплоиды радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), продуцируемые слитой спермой. Can J Fish Aquat Sci, 1995, 52: 892–896
Google Scholar
Бабяк И., Добош С., Горичко К., Кузьмински Х., Брзузан П., Чесельски С. Андрогенез у радужной форели с использованием криоконсервированных сперматозоидов: влияние обработки и биологические факторы. Териогенология, 2002, 57: 29249
Google Scholar
Thorgaard GH, Scheerer PD, Hershberger WK, Myers JM.Андрогенетическая радужная форель, полученная из спермы тетраплоидных самцов, демонстрирует повышенную выживаемость. Аквакультура, 1990, 85: 215–221
Google Scholar
Араи К., Икено М., Сузуки Р. Производство андрогенных диплоидных вьюнов Misgurnus anguillicaudatus с использованием сперматозоидов природных тетраплоидов. Аквакультура, 1995, 137: 131–138
Google Scholar
Fujimoto T, Yasui GS, Hayakawa M, Sakao S, Yamaha E, Arai K.Репродуктивная способность неотетраплоидных вьюнов, полученных с использованием диплоидных сперматозоидов природного тетраплоидного самца. Аквакультура, 2010, 308: s133–139
Google Scholar
Sun YD, Zhang C, Liu SJ, Duan W, Liu Y. Вызвал межвидовой андрогенез с использованием диплоидной спермы от аллотетраплоидных гибридов карпа обыкновенного × красный карась. Аквакультура, 2007, 264: 47–53
CAS Google Scholar
Дуань В., Цинь QB, Чен С., Лю С.Дж., Ван Дж., Чжан Ц., Сунь Ю.Д., Лю Ю.Формирование улучшенной тетраплоидной популяции гибридов красный карась × карп путем андрогенеза. Sci China Ser C-Life Sci, 2007, 50: 753–761
Google Scholar
Сонг С., Лю С.Дж., Сяо Дж., Хэ В.Г., Чжоу Ю., Цинь К.Б., Чжан С., Лю Ю. Полиплоидные организмы. Sci China Life Sci, 2012, 55: 301–311
PubMed Google Scholar
Бенфей Т.Дж. Физиология и поведение триплоидных рыб.Rev Fish Sci, 1999, 1: 39–67
Google Scholar
Gui JF, Xiao WH, Liang SC, Jiang YG. Предварительное исследование цитологического механизма триплоидии и тетраплоидии, вызванной шоком гидростатического давления у прозрачного окрашенного карася (на китайском языке). Acta Hydrobiol Sin, 1995, 19: 49–55
Google Scholar
Li WL, Xu Y, Deng H, Chen SL, Xie MS, Ji XS.Индукция и идентификация искусственных триплоидных мальков у Cynoglossus semilaevis (на китайском языке). J Fish China, 2011 г., 35: 925–931
Google Scholar
Wu C, Ye Y, Chen R, Liu X. Искусственный множественный триплоидный карп и его биологические характеристики. Аквакультура, 1993, 111: 255–262
Google Scholar
Гуи Дж. Ф., Чжоу Л. Генетические основы и селекционное применение клонального разнообразия и режимов двойного воспроизводства у полиплоида Carassius auratus gibelio .Sci China Life Sci, 2010, 53: 409–415
PubMed Google Scholar
Ван З.В., Чжу Х.П., Ван Д., Цзян Ф.Ф., Го В., Чжоу Л., Гуй Дж.Ф. Новый нуклео-цитоплазматический гибридный клон, образованный в результате андрогенеза у полиплоидного карпа-гибеля. Примечания BMC Res, 2011, 4: 82
PubMed Central PubMed Google Scholar
Chourrout D. Тетраплоидия, вызванная тепловыми ударами у радужной форели ( Salmo gairdneri R.). Reprod Nutr Dev, 1982, 22: 569–574
CAS. PubMed Google Scholar
Bidwell CA, Chrisman CL, Libey G. Полиплоидия, вызванная тепловым шоком у канального сома. Аквакультура, 1985, 51: 25–32
Google Scholar
Флайшанс М., Линхарт О., Квасницка П. Генетические исследования линя ( Tinea tinea L.): индуцированная триплоидия и тетраплоидия и первые данные по продуктивности.Аквакультура, 1993, 113: 301–312
Google Scholar
Нам Ю.К., Чой Г.К., Парк Диджей, Ким Д.С. Выживаемость и рост индуцированного тетраплоидного вьюна. Aquacult Int, 2001, 9: 61–71
Google Scholar
Li WL, Chen SL, Ji XS, Xie MS, Xu Y, Deng H. Индукция и идентификация тетраплоидных мальков у Cynoglossus semilaevis (на китайском языке). J Fish Sci China, 2012, 19: 196–201
CAS Google Scholar
Майерс Дж.Индукция тетраплоида у Oreochromis spp. Аквакультура, 1986, 57: 281–287
Google Scholar
Gui JF, Sun JM, Liang SC, Huang WY, Jiang YG. Исследования манипуляции геномом у рыб II. Тетраплоидия, вызванная обработкой гидростатическим давлением и комбинацией обработки гидростатическим давлением и холодом у прозрачного окрашенного карася (на китайском языке). Acta Hydrobiol Sin, 1991, 15: 333–341
Google Scholar
Чжу Х. П., Гуй Дж. Ф.Идентификация организации генома необычной аллотетраплоидной формы Carassius auratus gibelio . Аквакультура, 2007, 265: 109–117
CAS Google Scholar
Цзоу С.М., Ли С.Ф., Цай В.К., Чжао Д.Л., Ян Х.Й. Создание плодородной тетраплоидной популяции тупорылого леща ( Megalobrama amblycephala ). Аквакультура, 2004, 238: 155–164
Google Scholar
Qin QB, He WG, Liu SJ, Wang J, Xiao J, Liu Y.Анализ организации и изменчивости 5S рДНК у полиплоидных гибридов от скрещиваний различных подсемейств рыб. J Exp Zool (Mol Dev Evol), 2010, 314: 403–411
Google Scholar
Лю SJ. Дистанционная гибридизация рыб (на китайском). Пекин: Science Press, 2015
Google Scholar
Zhu ZY, Li G, He L, Chen S. Перенос нового гена в оплодотворенную икру золотой рыбки ( Carassius auratus L.1758). З. Ангью Ихтиол, 1985, 1: 31–34
CAS Google Scholar
Houdebine LM, Chourrout D. Трансгенез у рыб. Experientia, 1991, 47: 891–897
CAS PubMed Google Scholar
Ремболд М., Лахири К., Фоулкс Н.С., Виттбродт Дж. Трансгенез у рыб: эффективный отбор трансгенных рыб путем совместной инъекции с флуоресцентной репортерной конструкцией.Нат Прот, 2006, 1: 1133–1139
CAS Google Scholar
Девлин РХ. Производство и оценка трансгенных рыб для аквакультуры. Australas Biotechnol, 1998, 8: 222–226
Google Scholar
Maclean N, Laight RJ. Трансгенные рыбы: оценка преимуществ и рисков. Fish Fish, 2000, 1: 146–172
Google Scholar
Fu C, Hu W, Wang Y, Zhu Z.Развитие трансгенных рыб в Китайской Народной Республике. Rev Sci Tech Off Int Epiz, 2005, 24: 299–307
CAS Google Scholar
Fu C, Cui Y, Hung SSO, Zhu Z. Рост и использование корма трансгенными карпами с гормоном роста человека F4, получавшими рационы с различным содержанием белка. J Fish Biol, 1998, 53: 115–129
CAS Google Scholar
Wu G, Sun Y, Zhu ZY.Перенос гена гормона роста у карпа. Aquat Living Resour, 2003 г., 16: 416–420
Google Scholar
Фэн Х, Цзэн Ц., Лю SJ, Чжан XJ, Чжоу GJ, Ли JZ, Лю Y, Ван Ю.П., Чен С.П., Ху В., Чжу З.Й. Изучение F1 трансгенных аллотраплоидных гибридов Carassius auratus red var. (♀) × Cyprinus carpio (♂) (на китайском языке). Acta Genet Sin, 2002, 29: 434–437
CAS PubMed Google Scholar
Фэн Х, Фу Й.М., Ло Дж., Ву Х, Лю Й, Лю SJ.Трансгенные аллотетраплоидные гибриды гена GH черного амура Carassius auratus red var. (♀) × Cyprinus carpio (♂). Sci China Life Sci, 2011, 41: 202–209
Google Scholar
Хью К.Л., Дэвис П.Л., Флетчер Г. Перенос гена антифриза у атлантического лосося. Мол Мар Биол Биотехнология, 1992, 1: 309–317
CAS PubMed Google Scholar
Данхэм, РА.Трансгенные рыбы, устойчивые к инфекционным заболеваниям, их риск и предотвращение побега в окружающую среду, а также будущие гены-кандидаты для манипуляций с трансгенами болезней. Comp Immunol Microbiol Infect Dis, 2009, 32: 139–161
PubMed Google Scholar
Данхэм Р.А., Уорр Г.В., Николс А., Дункан П.Л., Аргу Б., Миддлтон Д., Кукуктас Х. Повышенная устойчивость к бактериальным заболеваниям трансгенного канального сома, Ictalarus punctatus , обладающего генами цекропина.Mar Biotechnol, 2002, 4: 338–344
CAS PubMed Google Scholar
Мао В.Ф., Ван Ю.П., Ван В.Б., Ву Б., Фэн Дж. Х, Чжу З. Повышенная устойчивость к инфекции Aeromonas hydrophila и усиление фагоцитарной активности у трансгенного белого амура, трансгенного по лактоферрину человека ( Ctenopharyngodon idellus ). Аквакультура, 2004, 242: 93–103
CAS Google Scholar
Yu F, Xiao J, Liang XY, Liu SJ, Zhou GJ, Luo KK, Liu Y, Hu W, Wang YP, Zhu ZY.Быстрый рост и стерильность трансгенного триплоидного карпа с геном гормона роста. Chin Sci Bull, 2011, 56: 1679–1684
Google Scholar
Перуанская община получит дополнительное финансирование в размере 2 млн долларов для местного разведения форели
Проект в партнерстве с производителем радужной форели Piscis и перуанским кредитным союзом Abaco финансируется IDB Lab, инновационной лабораторией Группы Межамериканского банка развития (IDB).Цель состоит в том, чтобы повысить экономическую и экологическую устойчивость местного форелевого хозяйства.
«Прямо сейчас много форели продается на местном уровне в Перу или Боливии», — сказал Hatchery International Энди Дэвисон, менеджер по продукции Umitron в Токио. «Piscis, наш партнер в этом проекте, экспортирует продукцию на множество различных зарубежных рынков, и эта сторона бизнеса имеет потенциал для роста и увеличения доходов местной экономики вокруг озера Титикака».
Местная промышленность Перу растет: производство 100 000 тонн в 2016 году, по прогнозам, вырастет до 221 000 тонн к 2030 году.Это соответствует тенденции роста отрасли аквакультуры в Латинской Америке и Карибском бассейне, где, по оценкам Продовольственной и сельскохозяйственной организации Объединенных Наций (ФАО), производство рыбы с помощью аквакультуры вырастет с 2,7 млн тонн в 2016 году до 4,0 млн тонн в 2030 году.
IDB сначала обратился к Umitron, чтобы оценить его интерес к сотрудничеству над проектом в Латинской Америке, и связал компанию с Piscis. После пары поездок в Японию и Перу сотрудничество обрело форму.
Технология кормленияUmitron с использованием искусственного интеллекта (ИИ) снижает потребность фермеров в ежедневном посещении каждой отдельной клетки для кормления и наблюдения. Вместо этого за рыбой можно удаленно наблюдать и кормить. Автоматическая кормушка также может уменьшить перекармливание и повысить общую эффективность использования корма.
Помимо повышения эффективности кормления в выращиваемых клетках, Umitron также изучает возможности адаптации своей системы для кормления рыб на всех этапах жизни, в том числе в инкубатории, объясняет Дэвисон.
«В целом, мы заинтересованы в использовании технологий анализа данных, машинного обучения и Интернета вещей для решения узких мест и проблем во всех сферах аквакультуры», — сказал он, добавив: «Если у операторов инкубатория есть предложения о том, как подключенные устройства, сбор данных , или аналитика данных может помочь их операциям, мы будем рады получить от них известие ».
Посредством различных технологических испытаний и обучения местных производителей конечной целью проекта является внедрение технологии кормления аквакультуры на основе данных в реальном времени для фермеров как в Перу, так и, в конечном итоге, во всей Латинской Америке.
Этот проект является первым шагом в долгосрочных планах Umitron по поддержке и развитию технологий для латиноамериканских производителей аквакультуры. Компания заявила, что посредством эффективных инвестиций Umitron ищет аналогичные государственно-частные партнерства, где они могут помочь производителям аквакультуры повысить их способность поставлять высококачественную, устойчиво выращенную продукцию как в Латинской Америке, так и за рубежом.
ЖурналFisheriessciences.com | Insight Medical Publishing
Импакт-фактор журнала (5 и 2 года): 1.40 *, 0,712 *
Глобальный импакт-фактор: 0,714
Google Scholar h5 Index: 6
Импакт-фактор Research Gate: 0,19
Index Copernicus Значение: 86,33
Journal of FisheriesSciences.com — это журнал с открытым доступом, в котором публикуются рецензируемые статьи, охватывающие все аспекты наук о рыболовстве, включая технологии рыболовства, управление рыболовством, морепродукты, водные (как пресноводные, так и морские) системы, системы аквакультуры и управление здравоохранением, водные пищевые ресурсы из пресноводных, солоноватых и морских сред и их границ, включая влияние деятельности человека на эти системы.Поскольку указанные области неизбежно сталкиваются и взаимосвязаны друг с другом. Это многопрофильный журнал, и авторам рекомендуется подчеркивать актуальность своей работы по другим дисциплинам.
Журнал FisheriesSciences.com следует процессу простого слепого экспертного обзора для проверки работы исследователей / ученых / ученых. Обработка рецензий осуществляется членами редколлегии журнала или сторонними экспертами; Для принятия любой цитируемой рукописи требуется одобрение как минимум одного независимого рецензента с последующим одобрением редактора.Авторы могут отслеживать свой прогресс через систему. Рецензенты могут скачивать рукописи и отправлять свои мнения редактору. Редакторы могут управлять всем процессом подачи / рецензирования / исправления / публикации.
Заявление об открытом доступе
Это журнал с открытым доступом, что означает, что весь контент бесплатно доступен для пользователя или его / ее учреждения. Пользователи могут читать, скачивать, копировать, распространять, распечатывать, искать или ссылаться на полные тексты статей, а также использовать их для любых других законных целей без предварительного разрешения издателя или автора.Это соответствует определению открытого доступа BOAI.
Пожалуйста, отправьте рукопись по адресу: https://www.imedpub.com/submissions/fisheries-sciences.html
Вы можете отправить как вложение к электронному письму: [электронная почта защищена]
Управление рыболовством
Управление рыболовством включает регулирование, защиту и сохранение рыболовства. Управление рыболовством опирается на науку о рыболовстве, чтобы найти способы защиты рыбных ресурсов, чтобы стало возможным их устойчивое использование.Его можно определить как «Интегрированный процесс сбора информации, анализа, планирования, консультаций, принятия решений, распределения ресурсов, а также формулировки и реализации с обеспечением, при необходимости, положений или правил, регулирующих рыболовную деятельность, с целью обеспечения непрерывного продуктивность ресурсов и выполнение других задач рыболовства »
Связанные журналы управления рыболовством
Морская геномика, водные живые ресурсы, Журнал исследований и управления китообразными, Ботаника Марина, Морские исследования Гельголанда, Неотропическая ихтиология, водоросли.
Морепродукты
Любая морская форма жизни, которую люди рассматривают как пищу, называется морской пищей. Это пища с высоким содержанием белка, низким содержанием калорий и жиров. Морепродукты — это любая морская жизнь, которую люди считают пищей. Среди морепродуктов заметно преобладают рыба и моллюски. Моллюски включают различные виды моллюсков, ракообразных и иглокожих.
Связанные журналы морепродуктов
Средиземноморская морская наука, водные вторжения, внутренние воды, Журнал биологии ракообразных, экология и управление водно-болотными угодьями, Международная аквакультура, Африканский журнал морских наук, Журнал прикладной ихтиологии
Управление водным здоровьем
Управление здоровьем водной среды — это глобальная концепция защиты, сохранения и контроля болезней водных животных.Основная цель — принятие и продвижение концепции здоровья экосистемы и улучшение понимания морской и пресной воды, структуры, функций, экологии и динамики трофической сети.
Связанные журналы по управлению водным здоровьем
Экология пресноводных рыб, соленые системы, журнал исследований Великих озер, ихтиологические исследования пресных вод, управление океаном и прибрежными районами, экологическая биология рыб, морские исследования.
Водные (пресноводные и морские) системы
Характерная экосистема, присутствующая под водой, называется водной системой.Экосистема — это объект, образованный взаимодействием между живыми организмами и физической средой. Он подразделяется на две основные категории: наземные экосистемы и водные экосистемы. Наземные экосистемы содержат организмы, которые зависят от физической среды на суше континентов. Водные экосистемы — это системы, состоящие из живых организмов и неживых элементов, взаимодействующих в водной среде.
Связанные журналы водных (пресноводных и морских) систем
Африканский журнал морских наук, Журнал прикладной ихтиологии, Анналы де Лимнологи, Криптогамия, Алгология, Сиенсиас Маринас, Сайентиа Марина.
Рыболовная техника
Технология, направленная на повышение эффективности рыболовства, называется рыболовной техникой. Приемы ловли рыбы — это способы ловли рыбы. Этот термин также может применяться к методам ловли других водных животных, таких как моллюски (моллюски, кальмары, осьминоги) и съедобные морские беспозвоночные. Методы рыбной ловли включают сбор с рук, подводную охоту, сетку, ловлю и ловлю.
Связанные журналы по рыболовной технике
Морская геномика, водные живые ресурсы, Журнал исследований и управления китообразными, Ботаника Марина, Морские исследования Гельголанда, Неотропическая ихтиология.
Пресноводное рыболовство
Пресноводные рыбы проводят часть или большую часть своей жизни в новой воде, например, в водоемах и озерах, с соленостью менее 0,05%. Пресноводное рыболовство предоставляет общественности информацию по вопросам, связанным с управлением пресноводным рыболовством, включая текущие правила рыболовства, отчеты и публикации, а также руководства по рыбной ловле в популярных местах пресноводного рыболовства.
Связанные журналы пресноводного рыболовства
Пресноводные науки, управление рыболовством и экология, журнал болезней рыб, водная микробная экология, экология пресноводных рыб, соленые системы.
Рыболовство в солоноватой воде
Промысел в водах с большей соленостью, чем в пресной воде, считается промыслом в солоноватой воде. Качество почвы и воды для аквакультуры с солоноватой водой почти не отличается от пресноводной аквакультуры за исключением солености воды. Соленость представляет собой количество растворенной соли в данной единице воды и обычно выражается в г / кг воды (ppt). В солоноватоводных прудах соленость обычно колеблется от 0,5% до 30% в зависимости от удаленности от моря и сезонных колебаний из-за муссонных осадков.
Связанные журналы промысла в солоноватой воде
Инженерия аквакультуры, морское биоразнообразие, рыболовство, Калифорнийское совместное океаническое рыболовство, отчеты об исследованиях, исследования аквакультуры, водная экология, водные биосистемы, водная биология, исследования морской биологии.
Рыбные корма
Коммерческие водные культуры нуждаются в специально разработанном и питательном корме для поддержания их здоровья и продуктивности. В то время как все животные должны есть, а всех сельскохозяйственных животных нужно кормить, аквакультура представляет собой наиболее эффективный метод преобразования корма в пищевой белок.Исследования в рамках Инициативы NOAA-USDA по альтернативным кормовым продуктам ускорили прогресс в направлении сокращения использования рыбной муки и рыбьего жира в кормах для аквакультуры, сохранив при этом важные преимущества потребления морепродуктов для здоровья человека. Значительный прогресс в разработке альтернатив снизил зависимость от дикой рыбы, пойманной для этой цели.
Корм для связанных журналов рыболовства
Физиология и биохимия рыб, водная ботаника, Limnologica, морская геномика, водные живые ресурсы, журнал исследований и управления китообразными, Botanica Marina, морские исследования Гельголанда, неотропическая ихтиология.
Болезни рыболовства
Заболевания рыболовства следует принимать во внимание, так как некоторые болезни могут передаваться человеку во время употребления, а некоторые могут быть быстро смертельными. Это нарушает здоровье водной среды. Микобактериоз и нокардиоз, нематоды Anisakis, болезнь дрессировщика раков («тюленький палец») являются распространенными типами болезней рыб.
Связанные журналы болезней рыболовства
Пресноводные науки, Управление рыболовством и экология, Журнал болезней рыб, Экология водных микробов, Экология пресноводных рыб, Солевые системы, Журнал исследований Великих озер, Ихтиологические исследования пресных вод
Рыболовные лекарства
Рыбная медицина находит применение в управлении рыболовством.Это исследование по выявлению и лечению болезней рыб. Лекарства для использования в пресноводных или морских аквариумах. Болезни, вызванные болезнетворными организмами, подразделяются на три основные категории: бактериальные инфекции, грибковые инфекции и внешние или внутренние паразиты. Держите под рукой универсальное средство от каждой из этих категорий болезней, чтобы сэкономить драгоценное время в борьбе с болезнями аквариумных рыбок.
Рыбные вакцины
Вакцины для рыб Вакцинация защищает рыб от болезней, как и всех домашних животных.Помогает улучшить здоровье водной среды. Вакцины для рыб можно доставлять так же, как мы иммунизируем теплокровных животных. Рыбу можно иммунизировать путем погружения в вакцину на короткий период времени (от 30 секунд до 2 минут). Их можно иммунизировать путем инъекции, внутримышечно или внутрибрюшинно, а также перорально путем смешивания вакцин с кормом либо путем подкормки, либо путем включения в корм в качестве ингредиента.
Связанные журналы вакцин для рыб
Управление океаном и прибрежными районами, Экологическая биология рыб, морские исследования, Phycologia, Бюллетень морских наук, Европейский журнал психологии, Взаимодействие аквакультуры с окружающей средой, Журнал исследований моллюсков.
Производство морепродуктов
Обработка морских обитателей, которые люди считали пищей, называется переработкой морепродуктов. Seafood Processing Global обслуживает европейский и международный рынок оборудования для переработки морепродуктов, услуг, упаковки и логистики. Seafood Processing Global расположена в одном месте с Seafood Expo Global.
Патология рыб
Патология рыб связана с болезнями и паразитами, поражающими обычную жизнь рыб. Он изучает защитный механизм рыб от болезней и способы их лечения.Регулярно освещаются области, представляющие интерес патологии, включая взаимоотношения между хозяином и патогеном, исследования патогенов рыб, патофизиологию, методы диагностики, терапию, эпидемиологию, описания новых болезней.
Генетика и геном рыб
Аналитические генетические технологии, применимые к аквакультуре, включают: ДНК-маркеры, картирование генома, микроматрицы и секвенирование входят в раздел «Генетика рыб и геном рыб». Люди и рыбы имеют много общих путей развития, систем органов и физиологических механизмов, делая выводы, относящиеся к биологии человека. .Соответствующие преимущества рыбок данио, медаки, тетраодона или такифугу до сих пор хорошо использовались с помощью биоинформатического анализа и методов молекулярной биологии.
Рыболовство и загрязнение
Рыболовство и загрязнение привлекли внимание, потому что во избежание любого продемонстрированного воздействия на людей деятельность по управлению загрязнением, основанная на постоянных усилиях по оценке запасов, экологической оценке и экспериментальных исследованиях, может помочь обеспечить принятие рациональных решений в отношении использования прибрежных ресурсов и злоупотреблений ими. / эстуарные воды.Helgoländer Meeresuntersuchungen Helgoländer Meeresuntersuchungen Заглянуть внутрь Другие действия Экспорт цитирования Зарегистрироваться для обновлений журнала Об этом журнале Перепечатки и разрешения Добавить в статьи Опубликовать в Facebook, Twitter, LinkedIn
Рыболовные снасти
Рыболовные снасти — это оборудование, которое мы используем для ловли рыбы.